0 

 

 

 

 

UNIVERSIDADE DO VALE DO TAQUARI - UNIVATES 

CURSO DE ENGENHARIA QUÍMICA 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

AVALIAÇÃO DA ATIVIDADE ANTIOXIDANTE DPPH E QUELANTE 

DA FARINHA E EXTRATO DO PSEUDOFRUTO DE HOVENIA 

DULCIS THUNBERG OBTIDO POR ULTRASSOM 

 

Renata Pelin Viciniescki 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

Lajeado, novembro de 2020



1 

 

Renata Pelin Viciniescki 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

AVALIAÇÃO DA ATIVIDADE ANTIOXIDANTE DPPH E QUELANTE DA FARINHA 

E EXTRATO DO PSEUDOFRUTO DE HOVENIA DULCIS THUNBERG OBTIDO 

POR ULTRASSOM 

 

Trabalho final da disciplina de Conclusão de 

Curso II, do Curso de Engenharia Química, 

da Universidade do Vale do Taquari - 

Univates, como parte dos requisitos para 

obtenção do título de Bacharel em 

Engenharia Química. 

 

Orientadora: Prof.ª Dr.ª Cleide Borsoi 

 

 

 

 

 

 

 

Lajeado, novembro de 2020



2 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 “Em algum lugar, algo incrível está esperando para ser 

descoberto.” Carl Sagan



3 

 

 
 
 
 
 
 
 
 

 
RESUMO 

 
 

 

 
A árvore Hovenia dulcis Thunberg (H. dulcis Thunb.), conhecida popularmente como 
uva japonesa, é um vegetal invasor que possui densa população na região sul do 
Brasil. Esta planta possui um pseudofruto rico em carboidratos e detentor de sabor 
doce, que pode ser utilizado na alimentação humana e animal, porém pouco explorado 
no país para fins alimentícios. Visando o proveito destes pseudofrutos, este trabalho 
busca extrair polissacarídeos que possam ser empregados em aditivos para a 
indústria alimentícia, apresentando atividade antioxidante DPPH (2,2-difenil-1-
picrilhidrazila) e quelante. Para o estudo, os pseudofrutos foram obtidos na região 
serrana do Rio Grande do Sul, devidamente sanitizados e caracterizados de maneira 
físico-química. A extração do extrato foi realizada por método de ultrassom na 
condição de 550 W de potência, frequência do equipamento a 20 kHz, tempo de 
exposição de 50 minutos e temperatura de 60 ºC no sonicador de ponteira. O material 
obtido na extração sofreu purificação por filtração. Com o extrato devidamente 
purificado, seus constituintes foram caracterizados bem como suas propriedades 
bioativas de antioxidante DPPH e quelante de Fe+2, análises igualmente realizadas 
para a farinha do pseudofruto. O extrato não apresentou polissacarídeos, apenas os 
monossacarídeos glicose e frutose, o que demonstra que a técnica de ultrassom nas 
condições utilizadas não foi eficiente na extração de polissacarídeos, já as análises 
de antioxidante DPPH e quelante Fe+2 também não apresentaram essas atividades 
bioativas. Já a farinha do pseudofruto apresentou atividade em ambas análises de 
antioxidantes, com IC50 (concentração do analito que induz metade do efeito máximo) 
de 3,36 (±0,01) mg.mL-1 para DPPH e 2,00 (±0,01) mg.mL-1 para quelante, valores 
próximos aos encontrados em literatura. Assim conclui-se que apesar do método e as 
condições de extração neste trabalho não resultarem na extração de polissacarídeos 
a farinha de pseudofruto da H. dulcis Thunb., apresenta atividade antioxidante DPPH 
e quelante de Fe+2. 
 
Palavras-chave: Hovia dulcis Thunberg, polissacarídeos, ultrassom, antioxidante, 
DPPH, quelante. 
 
 
 
 



4 

 

 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 

LISTA DE ILUSTRAÇÕES 
 
 
 
 

LISTA DE FIGURAS 
 

Figura 1 - Estrutura química dos antioxidantes utilizados na indústria de 

alimentos....................................................................................................................22 

Figura 2 - Folha da planta H. dulcis Thunb. (A) e suas flores características 

(B)...............................................................................................................................26 

Figura 3 - Pseudofrutos da H. dulcis Thunb................................................................27 

Figura 4 - Processo de cavitação por ultrassom..........................................................32 

Figura 5 – Fluxograma de processo de extração e caracterização do extrato do 

pseudofruto de H. dulcis 

Thunb.........................................................................................................................35 

Figura 6 - Perfil cromatográfico dos carboidratos presentes no extrato do pseudofruto 

da  H. dulcis Thunb., pelo método 1...........................................................................49 

Figura 7 - Curva padrão da atividade antioxidante de DPPH da farinha do pseudofruto 

da H. dulcis Thunb......................................................................................................52 

Figura 8 - Curva padrão da atividade quelante de Fe+2 da farinha do pseudofruto da 

H. dulcis Thunb..........................................................................................................53 

 

 

 

 



5 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

LISTA DE TABELAS 

 

 

 

Tabela 1 - Caracterização físico-química do pseudofruto de H. dulcis 

Thunb.........................................................................................................................29 

Tabela 2 - Condição operacional do processo de extração por 

ultrassom....................................................................................................................41 

Tabela 3 – Caracterização centesimal do pseudofruto da H. dulcis Thunb...............45 

Tabela 4 – Perfil quantitativo e qualitativo de monossacarídeos presentes no extrato 

do pseudofruto da  H. dulcis Thunb. extraído por ultrassom, pelos métodos 

cromatográficos 1 e 2..................................................................................................49 

Tabela 5 – IC50 da atividade antioxidante DPPH e quelante de Fe+2  da farinha do 

pseudofruto da H. dulcis Thunb..................................................................................53 

Tabela 6 – Capacidade antioxidante de DPPH de conservantes comerciais e da 

farinha do pseudofruto da H. dulcis Thunb.................................................................55 

 

 

 

 
 
 
 
 
 
 



6 

 

 
 
 
 
 
 
 
 
 
 

LISTA DE QUADROS 
 
 
 
 

Quadro 1 - Antioxidantes mais utilizados na indústria alimentícia, permitidos pela 

legislação brasileira ...................................................................................................23 

 
 

 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 



7 

 

 
 
 
 
 
 
 
 
 
 

LISTA DE ABREVIATURAS E SIGLAS 
 
 
 
 

%  Porcento  

± Mais ou menos 

A  Amostra A 

ABA  Absorbância 

ABTS   Ácido 2,2'-azinobis-3-etilbenzotiazolina-6-sulfônico 

B  Amostra B 

BHT  Butil-hidroxitolueno 

CNP  Florestas Centro Nacional de Pesquisa de Florestas  

CUPRAC   Cupric ion reducing antioxidant capacity 

Da   Dalton  

DNA     Ácido desoxirribonucleico 

DP                  Degree of polymerization 

DP  Desvio padrão 



8 

 

DPPH  2,2-difenil-1-picrilhidrazil 

           BHA  Butil-hidroxianisol  

EDTA Ácido etileno diaminotetracético 

EMBRAPA  Empresa Brasileira de Pesquisa em Agropecuária 

ERRO’s                      Espécies reativas de oxigênio 

FRAP  Ferric reducing antioxidant power 

g  Gramas 

h  Horas 

IC50                                 Concentração que induz metade do efeito máximo 

H. dulcis Thunb.    Hovenia dulcis Thunberg 

kDa  Kilo Dalton 

kHz  Kilohertz 

km  Quilômetro 

L  Litro 

LDL     Low Density Lipoproteins 

m/m  Proporção massa por massa 

m/v  Proporção massa por volume 

mg  Miligrama 

ml  Mililitro 

mm  Micrômetro 



9 

 

nm  Nanômetro 

ºC  Graus Celsius  

ORAC  Oxygen radical absorbance capacity 

PANC  Planta alimentícia não convencional 

ppm  Partes por milhão 

rpm  Rotações por minuto 

TBARS  Thiobarbituric acid reactive substances 

TNT                                 Tecido não tecido 

TRAP  Total reactive antioxidant potential 

U/ml  Concentração de atividade enzimática 

W  Watts 

μg  Micrograma 

μL  Microlitro 

 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 



10 

 

 
 
 
 
 
 
 
 
 

SUMÁRIO 
 
 

 
1 INTRODUÇÃO ....................................................................................................... 12 
    1.1 Objetivos..........................................................................................................13 

1.1.1 Objetivo geral .............................................................................................. 13 

1.1.2 Objetivos específicos ................................................................................. 14 

1.2 Justificativa .................................................................................................... 14 

2 REFERENCIAL TEÓRICO ..................................................................................... 16 
2.1 Carboidratos ................................................................................................... 16 

2.2 Polissacarídeos .............................................................................................. 17 

   2.2.1 Principais propriedades e polissacarídeos utilizados na indústria ........ 18 

2.3 Antioxidantes ................................................................................................. 21 

    2.4 Antioxidantes quelantes ................................................................................24 

2.5 Hovenia dulcis Thunberg .............................................................................. 25 

   2.5.1 Aplicações e caracterização do pseudofruto da H. dulcis Thunb........... 28 

2.6 Métodos de extração de polissacarídeos .................................................... 30 

   2.6.1 Extração de polissacarídeos por ultrassom ............................................. 31 

3 METODOLOGIA .................................................................................................... 34 

   3.1 Etapa 1 – Colheita, processamento e caracterização do pseudofruto ...... 36 

   3.1.1 Colheita dos pseudofrutos..........................................................................36 

3.1.2 Processamento do pseudofruto ................................................................ 37 

   3.1.3 Determinação do Teor de Umidade ........................................................... 37 

   3.1.4 Determinação do Teor de Lipídios ............................................................. 37 

   3.1.5 Determinação do Teor de Fibra Bruta ....................................................... 38 

   3.1.6 Determinação do Teor de Proteínas .......................................................... 39 

   3.1.7 Determinação do Teor de Carboidratos Totais ......................................... 40 

   3.1.8 Determinação do Valor Calórico.................................................................40  

3.2 Etapa 2 - Extração de polissacarídeos ......................................................... 40 

   3.2.1 Pré-tratamento ............................................................................................. 41 

   3.2.2 Extração do extrato por ultrassom ............................................................ 41 

   3.3 Etapa 3 - Caracterização do extrato .............................................................. 42 

   3.3.1 Caracterização do extrato ........................................................................... 42 



11 

 

   3.3.2 Determinação do potencial de antioxidante DPPH................................... 42 

   3.3.3 Determinação do potencial de quelante de Fe2+ ....................................... 43 

4 RESULTADOS E DISCUSSÕES ........................................................................... 44 
   4.1 Caracterização do Pseudofruto da H. dulcis Thunb....................................44 

   4.2 Caracterização do extrato do Pseudofruto da H. dulcis Thunb..................47 

   4.3 Atividade antioxidante DPPH e quelante de Fe+2 da farinha do Pseudofruto 

da H. dulcis Thunb........................................................................................... .......51 

   4.4 Atividade antioxidante DPPH e quelante de Fe+2 do extrato do Pseudofruto 
da H. dulcis Thunb................................................................................................... 56 

5 CONCLUSÃO ........................................................................................................ 57 

6 SUGESTÃO PARA TRABALHOS FUTUROS ...................................................... 58 

REFERÊNCIAS ......................................................................................................... 59 

 

 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 



12 

 

 
 

1 INTRODUÇÃO 

 

A árvore H. dulcis Thunb. é um vegetal originário da Ásia é encontrado 

principalmente na China, Japão e Coreia do Norte e Sul. Participa da família botânica 

Rhamnaceae, que se constituem em plantas angiospérmicas, possuindo frondosa 

copa e pseudofrutos com intenso sabor doce e ricos em carboidratos, proporcionando 

atração da fauna apícola e demais animais que os consomem. A madeira é 

amplamente utilizada e possui qualidade para produção de móveis (LIMA, 2006). 

A H. dulcis Thunb. foi introduzida no Brasil principalmente na região sul, 

possivelmente em meados de 1987, pelo Centro Nacional de Pesquisa de Florestas 

da Empresa Brasileira de Pesquisa em Agropecuária (CNPFlorestas/EMBRAPA) que 

adquiriu sementes da variedade H. dulcis Thunb. da Academia Chinesa de Florestas. 

A origem das sementes deu-se de duas regiões da China e foi utilizada para fins de 

ornamentação no Brasil (RIGATTO; PEREIRA; MATTOS, 2001). 

Apesar do uso inicialmente voltado para ornamentação a H. dulcis Thunb. 

possui um pseudofruto com inúmeras possibilidades de utilização. O pseudofruto pode 

ser utilizado na alimentação humana na forma de doces e geleias e na alimentação 

animal na forma de farinhas (XU; DENG; SUNG, 2014). Porém um dos usos mais 

nobres pode ser obtido quando o pseudofruto atinge estágio final de maturação.  Neste 

estágio o pseudofruto possui grande quantidade de carboidratos, entre os quais 

polissacarídeos com atividades bioativas como atividade hipoglicemiante, 

antioxidante, hepatoprotetor, antitumoral e quelante (YANG et al., 2019a). 



13 

 

Segundo Liu et al. (2020) os polissacarídeos provenientes do pseudofruto na 

H. dulcis Thunb. possuem, função antioxidante e quelante de Fe+2, podendo ser 

empregados na forma de aditivos alimentares e farmacológicos, a fim de tirar proveito 

dos benefícios que estas funções podem proporcionar ao organismo humano. A 

atividade antioxidante e quelante em aditivos alimentares podem minimizar problemas 

cardíacos, musculares e reverter danos causados pelo envelhecimento precoce, além 

de atuarem como conservantes (DE BIAGGI et al., 2020). 

Para obtenção destes polissacarídeos com atividade antioxidante e quelante, o 

método que pode ser aplicado é a extração por ultrassom. Este método obtém 

polissacarídeos com alta estabilidade térmica e rendimento superior a métodos como 

extração por água quente e solvente (KRUG, 2008). A extração por ultrassom é uma 

técnica considerada limpa e segura, não gera grandes volumes de efluentes nem 

resíduos perigosos à saúde humana e ao ambiente, sendo uma técnica altamente 

adequada para alcance de polissacarídeos com fins alimentares (YANG et al., 2020). 

Logo, o aproveitamento de recursos naturais regionais se torna uma alternativa 

na obtenção de produtos com maior valor agregado. Deste modo, este estudo visa a 

avaliação da utilização e processamento do pseudofruto da H. dulcis Thunb. para fins 

alimentícios e industriais. Para isso, será realizada a extração por método de 

ultrassom e caracterização dos polissacarídeos do pseudofruto e determinação do seu 

potencial antioxidante e quelante. 

 

1.1 Objetivos 

 

1.1.1 Objetivo geral 

O objetivo geral deste trabalho consiste na obtenção e caracterização da 

farinha do pseudofruto da árvore H. dulcis Thunb. e avaliação do processo de extração 

por ultrassom quanto a composição e atividade antioxidante e quelante do extrato 

obtido. 

 



14 

 

1.1.2 Objetivos específicos 

São designados como objetivos específicos: 

• Caracterizar a farinha do pseudofruto da H. dulcis Thunb. quanto suas 

propriedades físico-químicas. 

• Avaliar a condição de obtenção do extrato do pseudofruto de H. dulcis Thunb. 

utilizando ultrassom, quanto ao rendimento de extração. 

• Caracterizar o produto obtido da extração do pseudofruto da H. dulcis Thunb. 

• Verificar o potencial antioxidante e quelante da farinha e o extrato do 

pseudofruto da H. dulcis Thunb. 

 

1.2 Justificativa 

A H. dulcis Thunb. apesar de não ser uma espécie nativa brasileira, está 

perfeitamente adaptada às condições ambientais da região sul do Brasil, logo com 

sua população crescendo, atualmente a H. dulcis Thunb. já é um recurso natural 

abundante. Contudo, apesar da quantidade disponível de árvores, esta espécie ainda 

não possui uma utilização nobre de suas partes, como a madeira e os pseudofrutos 

(RIGATTO; PEREIRA; MATTOS, 2001). 

Apesar do consumo do pseudofruto da uva japonesa não ser popular no Brasil, 

nos países onde a H. dulcis Thunb. é nativa, como China e Japão, seu uso é 

amplamente aplicado na alimentação humana e na obtenção de ativos bioquímicos 

empregados na indústria e na área farmacêutica (LIU et al., 2020). Logo o 

aproveitamento deste recurso natural pouco explorado na região sul do Brasil, através 

da extração de produtos com potencial alimentício, pode gerar muito valor agregado 

ao pseudofruto, uma vez que este recurso está sendo produzido, porém subutilizado 

apenas como esporádica alimentação animal e paisagismo (FIORIO et al., 2015). 

Com o intuito de utilizar os pseudofrutos da uva japonesa, disponíveis em 

grandes quantidades no seu período de maturação, é possível extrair substâncias 

úteis com fins nobres, como para a indústria de alimentos. Pode-se extrair do 



15 

 

pseudofruto da H. dulcis Thunb. polissacarídeos com ação antioxidante e quelantes 

de ferro, de maneira a empregá-los em aditivos alimentares, enriquecendo e 

agregando valor ao pseudofruto (DE BIAGGI et al., 2020). 

   

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 



16 

 

 

2 REFERENCIAL TEÓRICO 

2.1  Carboidratos 

O carboidrato é um macronutriente muito importante na alimentação e fonte de 

energia para os seres vivos. O termo “carboidrato” compreende uma estrutura química 

elementar de Cx(H2O)y, onde ocorre a ligação entre átomos de carbono e átomos de 

oxigênio e hidrogênio em quantidades proporcionais às da água. Quando a estrutura 

elementar se repete apenas uma ou duas vezes, tem-se os monossacarídeos e 

dissacarídeos respectivamente, ao aumentar a cadeia de repetição da estrutura 

básica dos carboidratos, tem-se os oligossacarídeos e os polissacarídeos, 

carboidratos com maior complexidade que possuem funções diversas (DAMODARAN; 

PARKIN; FENNEMA, 2010). 

Os carboidratos compreendem mais de 90% dos constituintes de toda matéria 

vegetal e fazem parte da alimentação humana como componentes naturais ou 

aditivos. Possuem diversos tipos de estrutura molecular, configuração, tamanhos de 

cadeia de carbono e propriedades químicas e físicas, fazendo dos carboidratos 

efetivos em inúmeras atividades fisiológicas no corpo humano. Podem ser 

modificados de maneira química e física a fim de ampliar suas propriedades e 

aplicabilidades (STEPHEN; PHILLIPS; WILLIAMS, 2016).  

     



17 

 

2.2  Polissacarídeos 

Os polissacarídeos são carboidratos em cadeia polimerizada, genericamente 

chamados de glicanos, proveniente de monossacarídeos dispostos em cadeia linear 

ou ramificada, compostas de 10 a mais de 60.000 unidades, ligadas entre si através 

de ligações glicosídicas. A quantidade de monossacarídeos formadores de um poli, 

caracteriza o grau de polimerização (DP, do inglês degree of polymerization). Essas 

estruturas possuem alto peso molecular e a maior parte dos carboidratos se 

encontram enquadrados como polissacarídeos. São os polissacarídeos que, apesar 

de não possuírem sabor doce, possuem capacidade de conferir textura, viscosidade 

e palatabilidade aos alimentos, o que gera interesse da indústria na aplicação 

alimentícia (VOLLHARDT; SCHORE, 2013).  

Possuem diversas funções no organismo animal e vegetal, como reserva de 

energia na forma do polissacarídeo glicogênio e exercem função estrutural como a 

celulose em células vegetais. Estima-se que 90% da massa dos vegetais seja 

composta de polissacarídeos (STEPHEN; PHILLIPS; WILLIAMS, 2016).  

São classificados em homopolissacarídeos e heteropolissacarídeos. Os 

homopolissacarídeos são formados apenas por um tipo de monossacarídeo, no qual 

exercem a função estrutural, como por exemplo a celulose, que é um carboidrato de 

cadeia linear cuja função é enrijecer e dar forma às paredes celulares de vegetais, 

não sendo solúvel em água. Já os heteropolissacarídeos são açúcares formados por 

mais de um tipo de monossacarídeos, que tanto em animais como em vegetais, 

cumprem a função de preenchimento extracelular. Um exemplo de 

heteropolissacarídeos são os glicosaminoglicanos, que se ligam a proteínas na matriz 

celular humana que confere força e resistência mecânica aos tecidos (NELSON; COX, 

2011). 

Podem ser classificados inclusive pela sua digestibilidade no organismo 

humano, onde fornecem ou não energia metabólica. Os polissacarídeos digeríveis são 

fonte de energia e carboidratos para o corpo humano, porém o único polissacarídeo 

prontamente digerível pelo corpo humano é o amido, composto por outros dois 

polissacarídeos, a amilose e amilopectina. Os polissacarídeos não digeríveis estão 

disponíveis em quantidades significativas em vegetais e não são metabolizados pelo 



18 

 

organismo humano, não exercendo função energética. A celulose é um dos 

polissacarídeos não digeríveis e é o carboidrato mais abundante do planeta Terra, 

com estimativa que 50% de todo carbono existente no planeta esteja na forma de 

celulose. Além da celulose, tem-se também a classe das hemiceluloses, das pectinas 

e gomas (VIEIRA, 2003). 

Os polímeros de carboidratos não-digeríveis são nomeados de fibras 

alimentares ou dietéticas, logo, vegetais que possuem grandes quantidades de fibras 

alimentares em sua composição, possuem também grande quantidade de 

polissacarídeos. As fibras dietéticas podem ser solúveis ou insolúveis em água, sendo 

as insolúveis responsáveis pelo funcionamento do sistema gastrointestinal e formação 

do bolo fecal (MÁRQUEZ, 2011). Os polissacarídeos deste grupo são a celulose, a 

hemicelulose e a lignina. Os carboidratos das fibras alimentares solúveis em água, 

cumprem a função de regular os níveis de colesterol no organismo humano pois 

capturam os sais biliares, reduzindo os teores de colesterol. Os polissacarídeos 

solúveis pertencentes ao grupo das fibras são as pectinas e as gomas (LEWINSOHN; 

PRADO, 2002). 

 

2.2.1 Principais propriedades e polissacarídeos utilizados na indústria 

Polissacarídeos ou seus glicoconjugados são empregados principalmente na 

indústria de alimentos, como opção de aditivo de baixa caloria para produtos do tipo 

light e low fat. Derivados e novas versões de aditivos alimentares são em maioria 

provenientes de polissacarídeos, porém existe uma grande deficiência em suprir o 

mercado com polissacarídeos de alta qualidade. Possuem propriedade de formação 

de géis e espessante, gelatinização de soluções aquosas que são utilizadas na 

alteração da textura e viscosidade (GARCIA-CRUZ, 2001). 

Porém com novas técnicas de extração, estão sendo obtidos polissacarídeos 

com capacidade antioxidante, quelante e propriedades bioquímicas como efeito 

hepatoprotetor e atividades imunomoduladoras, que podem ter seus benefícios 

usufruídos através da inserção destes produtos na alimentação. Contudo ainda há 

pouca informação disponível sobre a extração e purificação em larga escala de 



19 

 

polissacarídeos para estes fins nobres e há poucos exemplos destes polissacarídeos 

sendo utilizados na indústria (DAMODARAN; PARKIN; FENNEMA, 2010). 

A propriedade mais utilizada dos polissacarídeos é a alteração da viscosidade, 

pelo tamanho, forma e conformação que adotam no solvente. Devido a estrutura 

química, os polissacarídeos são solúveis em água e quando inseridos em solução 

aquosa formam géis, que podem aumentar ou diminuir sua viscosidade de acordo 

com o tipo de polissacarídeo empregado ou concentração (CHAMPE; HARVEY; 

FERRIER, 2006). A forma adotada em solução aquosa depende das ligações 

glicosídicas entre os monossacarídeos formadores dos polissacarídeos, que podem 

assumir conformações aleatórias ou lineares. A orientação linear é mais comum entre 

esses carboidratos e geram fricção entre si, consumindo energia e aumentando a 

viscosidade. Contudo as moléculas que possuem conformação aleatória ocupam 

menos espaço que as lineares, não ocasionando ficção e por consequência não 

promovem grande aumento na viscosidade das soluções (NELSON; COX, 2011). 

A formação de géis também é uma propriedade importante que os 

polissacarídeos apresentam, a qual consiste na produção de redes tridimensionais de 

partículas ou moléculas conectadas que agregam grande quantidade de uma solução 

líquida. O gel provém da interação de substâncias poliméricas como os 

polissacarídeos e as proteínas, ligados por ligações de hidrogênio, iônicas ou 

covalentes, envoltas em soluções aquosas não participantes da zona de junção. Os 

géis assumem propriedades de sólidos e líquidos e características reológicas do 

estado de semi sólido viscoelástico, conferindo textura e consistência necessária em 

suas aplicações (NAJAFPOUR, 2017). 

O polissacarídeo mais utilizado na indústria de alimentos para conferência de 

viscosidade e textura é o amido e seus derivados. Ele está presente em caules, raízes 

e folhas de inúmeros vegetais como trigo, batata e cevada, trata-se de um 

polissacarídeo muito complexo, fundamental para a nutrição humana e animal 

(BORGES, 2009).  Existem distintos métodos de obtenção de amidos. Para a 

utilização alimentícia, o amido extraído por moagem da fonte vegetal e pouco 

processado, chamado de amido nativo, não sendo ideal para aplicações em alimentos 

processados à baixas temperaturas e elaborados, pois não se dissolve sem a ajuda 

do aumento de temperatura. Já o amido modificado confere formação de géis em 



20 

 

alimentos, com aumento da solubilidade em água e em espectro maior de pH e 

estabilidade (NUNES et al., 2017). 

Outros derivados do amido são as maltodextrinas e os maltooligossacarídeos, 

obtidos da hidrólise ácida ou enzimática do amido. A maltodextrina é mais utilizada na 

indústria alimentícia pois assume aspecto aquoso e solúvel em água, chamado de 

xarope de glicose. As maltodextrinas são as substâncias utilizadas como substitutas 

da textura da gordura vegetal hidrolizada e da gordura animal. Elas podem prevenir a 

cristalização, o congelamento e microencapsular aromas em produtos de panificação 

(LORET et al., 2004).  

Os demais polissacarídeos utilizados na indústria e que não se originam do 

amido são nomeados de polissacarídeos não amiláceos, conhecidos como 

hidrocolóides ou gomas alimentares e são comercializados na forma de pó (CHAMPE; 

HARVEY; FERRIER, 2006). Os principais representantes desta classe de aditivos 

alimentares são a celulose, pectina (LIMA, 2003), galactomananos (AGUILERA; 

CADOCHE; LOPEZ, 2001), goma xantana (BORGES, 2009), goma guar e a goma 

locuste (AGUILERA; CADOCHE; LOPEZ, 2001). Todos hidrocolóides podem 

apresentar propriedades alteradoras de viscosidade e geração de géis. Porém são 

utilizados na indústria de alimentos pois podem produzir efeitos como evitar 

congelamento, promover estrutura e estabilização de espumas, agregar volume e 

auxiliar na melhoria da palatabilidade de alimentos, ao reduzirem a fricção com a boca 

do consumidor (GARCIA-CRUZ, 2001). 

Um polissacarídeo com propriedades bioquímicas e largamente utilizado na 

indústria de alimentos é a inulina, empregada em alimentos destinados a pessoas com 

distúrbios metabólicos como a diabetes. Pode se originar de mais de 30.000 vegetais, 

principalmente da chicória e alcachofra. É um alimento de baixo teor energético com 

atuação semelhante a uma fibra dietética (VOLLHARDT; SCHORE, 2013). 

Os polissacarídeos ou seus glicoconjugados demonstraram exibir múltiplas 

atividades biológicas, incluindo anticarcinogênica, anticoagulante, imunoestimulante e 

antioxidante. Atualmente, muita atenção tem sido dada ao efeito antioxidante de vários 

compostos naturais microbianos ou vegetais, incluindo os polímeros de carboidratos, 

porque eles se tornam mais importante devido a sua grande aplicação na indústria 



21 

 

alimentícia ou farmacêutica. Geralmente, os antioxidantes representam um grupo 

diverso de tipos hidrofílicos e hidrofóbicos de compostos naturais que desempenham 

um papel importante na proteção de organismos vivos (CAPEK; MACHOVÁ; TURJAN, 

2009).  

Assim estudos sobre as atividades antioxidantes em extratos brutos de 

polissacarídeos vegetais, polissacarídeos purificados ou glicoproteínas de várias 

plantas medicinais indicam que esses carboidratos vegetais mostraram atividades 

antioxidantes significativas e podem ser explorados como antioxidantes potenciais 

(SUN et al., 2009). Na literatura há presença de 33 polissacarídeos que possuem 

funções biológicas como antioxidante, 34 que realizam efeito hepatoprotetor e 

atividades imunomoduladoras (LIU et al., 2015). Geralmente na indústria de alimentos 

em larga escala são utilizados antioxidantes artificiais e naturais como o tocoferol 

(vitamina E), ácido ascórbico (vitamina C) e betacaroteno, contudo ainda não há larga 

utilização de polissacarídeos para este fim (YANG et al., 2019a). 

 

2.3  Antioxidantes 

O processo de oxidação é fundamental à vida, garantindo a produção de 

energia celular e regulação do crescimento de microrganismos e inibição de infecções 

de vírus e bactérias. Contudo, a produção desenfreada de radicais livres em um 

organismo ocasiona patologias como câncer, envelhecimento precoce e processos 

degenerativos. Os oxidantes presentes no corpo humano são conhecidos como 

espécies reativas de oxigênio (ERRO’s), responsáveis pelo aumento nos danos aos 

tecidos, por oxidar moléculas de proteínas, lipídios, carboidratos e DNA. Logo, nas 

últimas décadas houve um crescimento no interesse de consumo de suplementos 

alimentares antioxidantes (CHENG, 2016).  

Algumas substâncias possuem capacidade de inibir ou prevenir 

significativamente a oxidação de substratos. Essas substâncias são os antioxidantes, 

compostos que em mínimas concentrações possuem grande poder de combate contra 

a oxidação. Agem em dois diferentes mecanismos para proteção antioxidante. O 

primeiro como antioxidantes “primários” que capturam radicais livres e o segundo 

mecanismo como antioxidantes “secundários” ou preventivos que agem na 



22 

 

desativação de metais e regeneração dos antioxidantes primários (KOLEVA et al., 

2012). 

A capacidade antioxidante das substâncias pode ser expressa através de 

parâmetros como a quantificação de produtos formados durante a peroxidação de 

lipídeos (TBARS, co-oxidação do β-caroteno para a oxidação do LDL), poder de 

remoção de radical orgânico (ABTS - ácido 2,2'-azinobis-3-etilbenzotiazolina-6-

sulfônico), o poder de redução de metal (CUPRAC - cupric ion reducing antioxidant 

capacity, FRAP - ferric reducing antioxidant power), capacidade de remoção de um 

radical peroxil (TRAP – total reactive antioxidant potential, ORAC - oxygen radical 

absorbance capacity) e  DPPH - peroxidação do 2,2-difenil-1-picrilhidrazil (ROCHA et 

al., 2012). 

Os principais antioxidantes utilizados na indústria de alimentos são de origem 

natural e artificial e possuem similaridade quanto à sua estrutura molecular básica, 

tendo pelo menos um anel aromático com um grupo hidroxila ligado. Estes 

antioxidantes são o butil-hidroxianisol (BHA) e butil-hidroxitolueno (BHT), galatos 

(propila, octila ou duodecila), ácido ascórbico e ácido úrico (Figura 1). Esse último, 

apesar de ter ação antioxidante seu consumo demasiado está associado à disfunção 

renal, endotelial e à hipertensão (FALLER, 2009). 

 

Figura 1 – Estrutura química dos antioxidantes utilizados na indústria de alimentos 

A). Butilhidroxitolueno (BHT), B) Butilhidroxianisol (BHA), comercialmente mistura de duas moléculas 

2-BHA E 3-BHA (esquerda para direita), C) Ácido ascórbico e D) Ácido úrico 

Fonte: Adaptado de Faller et al. (2009). 



23 

 

No intuito de utilizar tal propriedade bioquímica em prol da saúde humana, os 

antioxidantes que são adicionados em alimentos processados possuem legislação 

específica para regulamentação de seu uso (Quadro 1) de acordo com Agência 

Nacional De Vigilância Sanitária - ANVISA (ANVISA, 2019). Com o consumo destes 

alimentos, espera-se que ocorra aumento nas defesas naturais das células e eliminar 

radicais livres. Contudo, antioxidantes sintéticos podem causar hepatotoxicidade e 

carcinogênese (YANG et al., 2019a). 

 

Quadro 1 - Antioxidantes mais utilizados na indústria alimentícia, permitidos pela 

legislação brasileira. 

ANTIOXIDANTES CÓDIGO INS IDA* 

Ácido ascórbico 300 Não especificada 

Ácido cítrico 330 Não limitada 

Butil-hidroxianisol (BHA) 320 0-0,5 

Bulti-hidroxitolueno (BHT) 321 0,03 

Galato de propila 310 0-1,4 

Galato de dodecila 312 Não especificada 

Galato de octila 311 Não especificada 

Tocoferóis 307 0,15-2 

*IDA: Ingestão Diária Aceitável em Gramas 

Fonte: Adaptado de ANVISA (2019). 

 

Para obtenção destas substâncias naturais pode-se utilizar alguns vegetais e 

algas que possuem quantidades significativas de antioxidantes. Nos últimos anos os 

polissacarídeos provenientes de vegetais vêm ganhando mais atenção devido 

apresentarem atividades antioxidantes e grande presença destas substâncias. Alguns 

polissacarídeos demonstram capacidade de eliminação de radicais livres, inibição de 

doenças cardio e cerebrovasculares e atividade anti envelhecimento (WANG, 2017).  



24 

 

Os polissacarídeos possuem tal capacidade antioxidante devido serem 

moléculas altamente hidratadas e possuírem grupos hidroxila que podem servir como 

aceptores e doadores de hidrogênio. Logo, os grupos hidroxila são também sítios 

ativos que sequestram radicais pelo mecanismo de doação de átomos de hidrogênio 

(ALIMI et al., 2011). Essas características tornam os polissacarídeos, antioxidantes 

multipotentes, pois podem agir por múltiplos meios tanto como antioxidantes primários 

e secundários. O potencial em atuar como antioxidante dependerá de características 

dos polissacarídeos, como estruturas moleculares, tipos de monossacarídeos que os 

compõem, peso molecular e presença de grupos químicos ligados ao açúcar, como 

grupos sulfato, metil e carboxílico que estão intimamente ligados a atividade 

antioxidante dos polissacarídeos (CHEN et al., 2008). 

 

2.4  Antioxidantes quelantes 

Substâncias com propriedades quelantes são aquelas capazes de formar 

ligações covalentes com íons metálicos, onde quanto mais ligações estabelecem 

entre o quelante e o metal, maior é a estabilidade do complexo formado. Essa entidade 

quelante-íon metálico é nomeado de quelato. Quando o quelante forma apenas uma 

ligação com o íon metálico, é chamado de quelante monodentado, quando forma duas 

ligações, chama-se bidentado e quando forma três ou mais ligações é denominado 

polidentado (FLORA; PACHAURI, 2010). 

A principal função de quelantes é a inativação de íons metálicos, como cálcio, 

cobre, ferro e magnésio, através da formação do quelato. Os quelantes são 

empregados na indústria de saneantes, cosméticos e alimentos. Na indústria de 

alimentos, os quelantes são utilizados para inibir a precipitação dos corantes e 

atuando também como auxiliar na ação de conservantes, onde estes são inativados 

por íons metálicos presentes no produto. Assim os quelantes capturam os íons 

prejudiciais e aumentam o tempo de ação dos conservantes, principalmente 

antioxidantes (YUSSUF; COOK, 2004). 

O quelante mais utilizado de maneira geral tanto na indústria como na medicina 

é o quelante de ferro, mais propriamente da espécie Fe+2. Essa espécie é mais inibida 

pois no organismo humano os sais ferrosos de Fe+2 são prontamente adsorvidos e 



25 

 

solúveis em água, muito mais que o ferro na forma inorgânica (FeSO4) e sais férricos 

de Fe+3. A ingestão em excesso de ferro em qualquer forma pode ocasionar graves 

problemas de acúmulo do metal em tecidos do fígado e coração, gerando dores, 

problemas cardíacos e falha hepática. Logo a remoção deste excesso de ferro no 

corpo humano é vital e pode ser proporcionada pelos quelantes (MARTÍN et al., 2006).  

Assim as substâncias mais utilizadas na indústria alimentícia e farmacológica 

como quelante de Fe+2 são o ácido oxálico e ácido dicarboxílico, conhecidos como 

antinutrientes e o ácido fítico, proveniente de vegetais como no caso do pseudofruto 

da H. dulcis Thunb. (LIU et al., 2020). Os taninos também possuem atividade quelante 

de Fe+2 e se apresentam no chá preto e café (OLIVEIRA; QUEIROZ; HELBIG, 2001). 

A lignina e o polissacarídeo hemicelulose também são responsáveis pela quelação do 

íon Fe+2 e se originam naturalmente em vegetais. O quelante sintético mais utilizado 

na indústria de alimentos é a tetraciclina, conhecida como EDTA (ácido etileno 

diaminotetracético) empregada em produtos como maionese, marmeladas e sorvetes 

(SMITH; LEE, 2003). 

 

2.5 Hovenia dulcis Thunberg 

Espécies invasoras podem ser tanto animais como vegetais e são um problema 

a nível mundial, pois no geral, espécies não nativas não possuem os mesmos 

predadores e competidores que as locais, logo avançam no meio e se reproduzem 

com menos dificuldades que espécies endêmicas ou locais. Plantas invasoras são 

capazes de formar populações autossustentáveis e prosperar através de uma 

competição bem sucedida por recursos bióticos e abióticos, prejudicando a flora local 

(RIBEIRO et al., 2019). 

Uma espécie invasora que está prosperando na região sul do Brasil é a árvore 

frutífera H. dulcis Thunb., sendo considerada uma das maiores invasoras das florestas 

nativas brasileiras. A H. dulcis Thunb. é nomeada popularmente como “uva-japonesa”, 

“uva do Japão”, “pau doce”, entre outros nomes em diferentes partes do Brasil 

(BIONDI; PEDROSA-MACEDO, 2008). Sua ocorrência natural acontece em países 



26 

 

asiáticos, principalmente Japão, China e as Coréia do Norte e do Sul (RIGATTO; 

PEREIRA; MATTOS, 2001). 

A uva japonesa pertence à família botânica Rhamnaceae, que possui 58 

gêneros e aproximadamente 900 espécies. Das três espécies existentes na América 

tropical,  H. dulcis Thunb., H. trichocarpa e H. acerba, a primeira é a mais comum em 

território brasileiro (MAGGIONI; LAROCCA, 2009). A árvore uva japonesa é 

largamente utilizada por suas características, como ser heliófila, caducifólia, sendo 

amplamente utilizada como cobertura para o sol no período do verão e possibilitando 

mais entrada dos raios solares no inverno, período em que perde suas folhas. Pode 

atingir altura de 10 a 25 metros, com frondosa copa em forma globular. Seu diâmetro 

médio pode atingir até 50 centímetros e apresenta produção de pseudofrutos doces e 

massudos que podem ser consumidos por animais (TAIZ; ZEIGER, 2017). 

Apresenta folhas em formato ovalado com serrilhados nas extremidades e 

pontas em forma de agulha, onde caem da árvore no inverno. Além das folhas simples, 

a árvore de uva japonesa apresenta pequenas flores hermafroditas com cor branca e 

verde claro (Figura 2), que possuem cheiro e sabor adocicado, o que atrai a fauna 

apícola. A uva japonesa produz em grande quantidade um pseudofruto, cujo gosto 

muito doce se parece com pera madura que também atrai a fauna local para seu 

consumo (RIGATTO; PEREIRA; MATTOS, 2001). 

 

Figura 2 - Folha da planta H. dulcis Thunb. (A) e suas flores características (B) 

 

Fonte: Adaptado de Rigatto; Pereira; Mattos (2001). 



27 

 

A espécie vem sendo intensamente cultivada na Argentina, Paraguai e no sul 

do Brasil, em locais onde ocorre inverno rigoroso e estações bem definidas e em 

especial na região da bacia do Uruguai e nos estados brasileiros do Rio Grande do 

Sul, Paraná e Santa Catarina, onde são comumente encontradas em pequenos 

povoados e regiões agrícolas, implementada como planta de sobra, corta vento e 

alimento para animais silvestres e domésticos (BIONDI; PEDROSA-MACEDO, 2008). 

O que estabeleceu a nomenclatura popular para a H. dulcis Thunb. são seus 

pseudofrutos que erroneamente são chamados de frutos. Os frutos verdadeiros 

provenientes de uma flor são formados apenas a partir do ovário da planta, enquanto 

pseudofrutos são formados a partir do ovário, bem como do tecido adjacente, incluindo 

o receptáculo e o cálice. São estruturas reprodutivas da planta e podem atingir de 6 a 

7 mm de diâmetro e forma característica. O pseudofruto apresenta cor marrom com 

aspecto suculento e sabor doce intenso e em sua extremidade possui de 2 a 4 

sementes cor canela e arredondadas (Figura 3) (XU; DENG; SUNG, 2014). Nas 

regiões do sul do Brasil os pseudofrutos verdes aparecem entre os meses de 

novembro e dezembro e amadurecem entre os meses de março e maio (BAMPI et al., 

2010). 

 

Figura 3 - Pseudofrutos da H. dulcis Thunb. 

Fonte: Adaptado de Bampi et al. (2010). 



28 

 

2.5.1 Aplicações e caracterização do pseudofruto da H. dulcis Thunb. 

No Brasil a utilização do pseudofruto na produção de alimentos ou qualquer 

outro derivado não é comum, apenas a madeira é processada. Apesar da H. dulcis 

Thunb. estar densamente ocupando as matas na região sul do país e produzir grande 

quantidade de pseudofrutos, suas aplicações ainda são escassas, principalmente na 

produção de alimentos (MAGGIONI; LAROCCA, 2009). Contudo em países onde a 

uva japonesa é nativa, seu pseudofruto é consumido como alimento e processado 

para obtenção de inúmeros produtos derivados, como açúcares, vinagres, vinhos e 

marmeladas (BAMPI et al., 2010). 

Porém o interesse sobre a uva japonesa vem aumentando nos últimos anos, 

com estudos sobre diversas aplicações da planta e suas partes, desde o caule, as 

folhas o pseudofruto e sementes. Diversos estudos são encontrados na literatura para 

avaliação das características e diferentes capacidades de utilização da H. dulcis 

Thunb. (YANG et al., 2019a). De acordo com Park et al. (2019) os pseudofrutos de H. 

dulcis Thunb. apresentam efeito hepatoprotetor sobre lesões no fígado. Liu et al. 

(2015) constataram também o efeito de proteção hepática em camundongos 

intoxicados por álcool, com resultados significativos de melhora ao empregar os 

polissacarídeos advindos do pseudofruto da uva japonesa. 

Liu et al. (2020) observaram que as sementes de H. dulcis Thunb. aumentaram 

a capacidade de camundongos de acelerar a taxa de redução das concentrações de 

álcool no sangue em 1 a 2 horas, em comparação com o controle (ingerindo apenas 

etanol). Kim et al. (2017) observaram que o pseudofruto possui atividade 

imunoestimuladora in vitro com potencial natural de agente imunomodulador. Também 

possui, segundo estudos, a capacidade antibactericida e atividade antioxidante 

(NAGARAJ; AKBER; YONG, 2014).  

Além destes estudos ligados às atividades bioquímicas da H. dulcis Thunb. e 

sua importância em futuras aplicações no tratamento de algumas enfermidades, 

outros estudos caracterizaram desde o pseudofruto até a semente e caule, pois além 

da área da saúde, a planta também serve para alimentação humana e animal em 

muitas partes da Ásia e América do Sul (BUONO; OLIVEIRA; PAIVA, 2008).  



29 

 

No Brasil a uva japonesa é considerada uma planta alimentícia não 

convencional (PANC), porém não sendo consumida com muita frequência, devido a 

informações escassas de sua composição, cujo conhecimento pode auxiliar na 

administração segura da planta (RIBEIRO et al., 2019). Assim, para aplicação no ramo 

alimentício é necessário a caracterização das partes utilizadas, sendo encontrado na 

literatura alguns estudos sobre a composição da H. dulcis Thunb. principalmente do 

pseudofruto. Contudo, os resultados de alguns autores não são iguais para 

parâmetros como umidade e teor de açúcares, pois há alterações significativas devido 

grau de maturação, época do ano, variedade ou procedência e colheita (FIORIO et 

al., 2015).  O pseudofruto da uva japonesa possui proteína bruta, lipídios e fibras, além 

de polissacarídeos, açúcares redutores como a glicose e açúcares não redutores em 

sacarose. A Tabela 1 apresenta a caracterização físico-química do pseudofruto H. 

dulcis Thunb. encontrada na literatura. 

 

Tabela 1 - Caracterização físico-química do pseudofruto de H. dulcis Thunb. 

 

Análises 

BAMPI et al. 
(2010) 

MAIEVES et al. 
(2015a) 

FIORIO et al. 
(2015) 

MOECKE et 
al. (2000) 

Base 
 úmida 

(g/100g) 

Base  
úmida 

(g/100g) 

Base  
úmida 

(g/100g) 

Base  
úmida 

(g/100g) 

Umidade 54,08 67,65 61,80 - 

Cinzas 2,16 1,22 1,65 - 

Proteína bruta 3,74 0,41 3,33 3,00 

Lipídios 1,42 0,28 0,10 1,60 

Fibra bruta - - 2,37 3,84 

Fibra alimentar 12,56 15,13 - - 

Açúcares redutores 12,57 - 11,00 - 

Açúcares não redutores 6,89 16,80 11,80 - 

Açúcares totais 19,46 18,05 22,80 - 

Carboidratos por diferença - - 48,30 47,60 

Valor calórico (kcal 100g-1) 105,56 102,67 207,42 216,80 

Fonte: Adaptado de Bampi et al. (2010); Fiorio et al. (2015); Maieves et al. (2015a); Moecke et al. (2000) 



30 

 

Segundo Cecchi (2003), a presença de cinzas em análises físico-químicas de 

pseudofruto constitui a existência de minerais como K, Na, Ca e Mg. De acordo com 

estudo de Bampi et al. (2010) o pseudofruto da uva japonesa apresentou 2,16 g.100g-

1 de cinzas, o que indica considerável quantidade de minerais. Moecke (2000) 

constatou a presença de 710 mg.100g-1 de potássio. Como o pseudofruto da H. dulcis 

Thunb. um potencial aliado na ingestão de potássio na dieta humana, que deve ser 

de no mínimo 3,5 g. por dia para adultos, tem efeito no controle da pressão arterial 

elevada (TOMAZONI; SAVIERO, 2019). 

O pseudofruto apresentou de acordo com a Tabela 1, valores diminutos de 

lipídios, variando de 0,10 g.100g-1 a 1,42 g.100g-1. Frutas e hortaliças apresentam em 

média 3 g.100g-1 ou menos de lipídios em sua constituição, pois não são alimentos 

ricos em gordura, já as oleaginosas são os vegetais que mais possuem lipídios 

(SOUCI; FACHMANN; KRAUT, 2008).  

Quando observado o valor obtido por Bampi et al. (2010) e Maieves et al. 

(2015a) para a fibra alimentar, com resultado de 12,56 g.100g-1 e 15,13 g.100g-1 

conclui-se que este pseudofruto se enquadra como “fonte de fibras”, pois possui 

quantidade superior à 3 g.100g-1 de fibra bruta, conforme solicitado pela Vigilância 

Sanitária (BRASIL, 1998). Para o pseudofruto da H. dulcis Thunb., Maieves et al. 

(2015a), obtiveram 9,66 g.100 g-1 de fibras solúveis, principalmente pectina. A 

quantidade de pectina encontrada no pseudofruto da uva japonesa é maior que de 

frutos conhecidos por essa característica como a maçãs, damascos, pêssegos, citros 

e ameixas (SOUCI; FACHMANN; KRAUT, 2008). 

 

2.6  Métodos de extração de polissacarídeos 

A extração pode resultar em um processo demorado, caro ou ineficiente, 

dependendo do tipo de polissacarídeo a ser extraído e ao método escolhido. A 

exemplo, os polissacarídeos solúveis em água são normalmente extraídos por 

aquecimento e fervura, o que resulta em perda de compostos bioativos devido à 

ionização, hidrólise e oxidação durante a extração. O rendimento e propriedades 

físico-químicas também podem ser afetados pelo método de extração. A extração de 

polissacarídeos vegetais é complicada pela presença de polímeros complexos na 



31 

 

parede celular, o que pode impedir a extração de polissacarídeos, porém métodos 

diferentes podem obter o mesmo polissacarídeo, mas não as mesmas propriedades 

bioativas e suas composições variam de acordo com seu conteúdo relativo de 

monossacarídeos (CHEN et al., 2018). 

Park et al. (2019), obtiveram o polissacarídeo celulose por exposição do 

pseudofruto da H. dulcis Thunb. à atividade enzimática da enzima celulase produzida 

por Bacillus amyloliquefaciens DL-3. A extração foi realizada em meio aquoso com pH 

neutro e concentração do pseudofruto seco em pó de 80 g/L e temperatura de 50 ºC 

e quantidade de celulase de 75 U/mL. Após extração da celulose, foram empregadas 

as enzimas endocelulase, exocelulase e celobiose para quebra do polissacarídeo em 

açúcares redutores e não redutores. Além dos açúcares menores foi obtido o 

flavonoide ampelopsina, que possui atividade de proteção hepática contra os danos 

causados pelo álcool e atividade antioxidante e regulador de glicose no metabolismo 

animal.  

Outra possibilidade de obtenção de polissacarídeos pode ser por extração 

acelerada por solvente e extração por água quente. Yang et al. (2019a) avaliaram a 

extração acelerada por solvente. Os autores obtiveram o rendimento máximo dos 

carboidratos complexos em 23 minutos de processamento, temperatura de 130 ºC em 

2 ciclos com solvente. O rendimento máximo centesimal obtido pela extração por 

solvente foi de 8,62 ± 0,29% para 150 μm de tamanho de partícula de pó seco do 

pseudofruto da uva japonesa, já pelo método de extração por água quente, o 

rendimento máximo extraído de polissacarídeos foi de 6,89 ± 0,21% em massa 

centesimal de amostra seca. Após avaliação in vitro, o polissacarídeos da H. dulcis 

Thunb. apresentou atividade quelante de Fe+2, antioxidantes e antidiabéticos. Os 

autores sugeriram a aplicação do carboidrato em alimentos, cosméticos e produtos 

farmacêuticos. 

 

2.6.1  Extração de polissacarídeos por ultrassom 

A extração por ultrassom do pseudofruto da H. dulcis Thunb. produz 

polissacarídeos com excelente estabilidade térmica. Os testes reológicos concluem 

que os polissacarídeos exibem excelentes propriedades coloides e têm o potencial de 



32 

 

servir como agentes espessantes, gelificantes e estabilizadores na indústria de 

alimentos. Além disso, os polissacarídeos da H. dulcis Thunb. apresentaram 

capacidade de retenção de óleo, antiespumante e geração de emulsões. Apresentam 

também atividade antioxidante e habilidades de remoção de ânion superóxido e Fe2+ 

atividade quelante (PARK et al., 2019). 

Assim a técnica de extração por ultrassom é interessante na obtenção de 

polissacarídeos úteis para diversas aplicações, além de ser considerada uma técnica 

simples, rápida, geralmente não envolve uso de reagentes tóxicos e pode ser aplicada 

em diversos tamanhos de partículas. O processo possui como princípio a ação de 

ondas mecânicas de baixa frequência, as quais geram cavitação, fenômeno que gera 

e colapsa bolhas de água que resultam em pontuais áreas de altas temperaturas e 

pressão na superfície da amostra, facilitando o processo de extração. A extração 

ocorre, pois, quando a bolha de cavitação colapsa gera um “jato” de altíssima pressão 

que quando gerado próxima ou sobre a partícula a quebra possibilitando a formação 

de diferentes substâncias (KRUG, 2008). A Figura 4 apresenta o processo de 

cavitação por ultrassom. 

 

Figura 4 - Processo de cavitação por ultrassom 

 

(A)Superfície da partícula que sofrerá extração por ultrassom; (B) bolha de água em torno da partícula 

a ser quebrada; (C) bolha colapsada e formação de “jato” de alta pressão e temperatura, sobre a 

superfície da partícula, após sofrer efeito da cavitação. 

Fonte: Adaptado de Krug (2008). 

A 

B

 
C

 



33 

 

No estudo de Yang et al.  (2019b), os polissacarídeos do pseudofruto da H. 

dulcis Thunb. foram extraídos por meio da tecnologia de ultrassom de alta pressão. 

As maiores quantidades de material extraído foram obtidas na condição do ultrassom 

de alta pressão na potência de 330 W, temperatura de 68 °C e tempo de 22 minutos. 

O conteúdo do polissacarídeo proveniente da extração foi principalmente açúcar 

neutro na proporção centesimal em massa de 47,81% (± 1,56%), proteína com 3,64 

% (± 0,24%) e 12,52% (± 0,15%) de ácido urônico. O polissacarídeo era composto por 

pelos carboidratos manose, ramnose, ácido galacturônico, glicose, galactose e 

arabinose na proporção molar de 3,20%, 20,40%, 4,81%, 11,14%, 27,37% e 33,08%, 

respectivamente e massa molecular média de 185,22 kDa. O produto extraído 

apresentou atividade quelante de Fe+2, propriedades não newtonianas e atividades 

antioxidantes. 

Liu et al. (2015) utilizaram o método de ultrassom para extração dos 

polissacarídeos da uva japonesa. O procedimento de extração que apresentou maior 

rentabilidade foi a 60 ºC, com tempo de exposição ao ultrassom de 65 minutos e 

potência de 362 W. Nessa condição o rendimento máximo obtido de polissacarídeos 

brutos foi de 25,12 ± 0,14 mg.g-1 de pseudofruto em base seca. Após a extração com 

o ultrassom, os polissacarídeos foram precipitados com etanol em três frações 

diferentes (40%, 60% e 80%), nas quais os polissacarídeos se apresentaram após 

precipitação como açúcares ácidos, principalmente glicose, galactose, xilose, 

arabinose e ramnose. Os polissacarídeos extraídos apresentaram atividade 

antioxidante in vitro, assim os autores sugerem sua utilização como antioxidante 

natural em alimentos funcionais e na indústria farmacêutica.  

Utilizando também o método de ultrassom, Yang et al. (2020) realizaram a 

extração de polissacarídeos em três condições diferentes com variação de frequência, 

essas condições foram ultrassom de frequência única, dupla frequência e três 

frequências. O rendimento máximo de extração de polissacarídeos (9,02 ± 0,29%) foi 

obtido pela condição ultrassônica de dupla frequência com condições de operação, 

compreendendo 58 ºC, 66 minutos, 500 W e 28 e 40 kHz. Nesta extração, as duas 

diferentes frequências foram empregadas separadamente, com o primeiro banho de 

33 minutos a 28 kHz e o segundo banho de 33 minutos a 40 kHz, totalizando os 66 

minutos de exposição ultrassônica testado pelos autores neste estudo. 



34 

 

 

 

3 METODOLOGIA 

Para realização dos objetivos propostos neste trabalho, o estudo foi dividido em 

três etapas. A primeira compreendida entre a colheita e processamento, como 

lavagem, secagem e caracterização, com análises físico-químicas do pseudofruto da 

H. dulcis Thunb. A segunda etapa se constituiu no preparo do pseudofruto seco e 

moído, através do pré-tratamento com álcool etílico 80% e posterior extração dos 

polissacarídeos do material preparado. A terceira etapa se constitui pela 

caracterização quantitativa e qualitativa do material extraído na segunda etapa e o 

estudo do potencial antioxidante e quelante que o extrato e a farinha podem 

apresentar.  

A sequência das etapas um, dois e três realizadas no trabalho está 

representado na Figura 5, onde apresenta o fluxograma do processo de extração e 

caracterização do extrato obtidos a partir do pseudofruto da H. dulcis Thunb., Em cada 

etapa estão expostos os procedimentos realizados e as condições de operação, de 

maneira simplificada.  

 

 

 



35 

 

Figura 5 – Fluxograma de processo de extração e caracterização do extrato do 

pseudofruto de H. dulcis Thunb. 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

Fonte: Da autora (2020). 



36 

 

 

3.1  Etapa 1 – Colheita, processamento e caracterização do pseudofruto 

A primeira etapa compreendeu a colheita dos pseudofrutos que foram utilizados 

no trabalho. Os pseudofrutos foram processados, através de uma classificação, 

sanitização, secagem e posterior caracterização do pseudofruto. A caracterização do 

pseudofruto serviu para fins de comparação com resultados obtidos em literatura, 

através de análises físico-químicas de teor de lipídios, carboidratos, proteínas, 

umidade e fibra alimentar. 

 

3.1.1 Colheita dos pseudofrutos 

Os pseudofrutos da uva japonesa foram colhidos na localidade de Dois 

Lajeados, município do interior gaúcho, situado na serra e localizado a 

aproximadamente 190 km da capital Porto Alegre (PREFEITURA MUNICIPAL DE 

DOIS LAJEADOS, 2020). Nesta localidade os pseudofrutos foram colhidos de maneira 

manual com o corte de todo galho onde os pseudofrutos estão fixados, em pelo menos 

dez árvores diferentes. A colheita foi realizada no primeiro dia do mês de maio de 

2020, pois de acordo com Maieves et al. (2015b) é neste período que os pseudofrutos 

estão em estado final de maturação, apresentando maior quantidade de água e 

açúcares. 

Após a colheita, de maneira manual, os pseudofrutos foram classificados a fim 

de retirar do processo possíveis pseudofrutos em estágio de putrefação ou pouco 

maduros, pseudofrutos com manchas e sinais de predação por animais, restando 

apenas os pseudofrutos com coloração uniforme e corpo perfeito. Os pseudofrutos 

apropriados foram cortados do galho e removidas as sementes que se posicionam 

nas extremidades do corpo frutífero, com auxílio de uma tesoura. Os pseudofrutos 

foram lavados em água corrente a fim que retirar resíduos de terra ou outras sujidades, 

sanitizados com hipoclorito de sódio a 200 ppm por 10 minutos e secados com auxílio 

de toalhas de algodão, para retirada da água em excesso em torno do pseudofruto. 

 



37 

 

3.1.2 Processamento do pseudofruto 

Com os pseudofrutos higienizados e classificados, foram secos por 48 h a 60 ºC 

utilizando secador de bandejas com circulação de ar (marca Pardal), com intuito de 

remover umidade. Assim, os frutos foram armazenados em embalagem preta, sem 

exposição à luz e em ambiente seco, para posterior utilização. A moagem foi realizada 

utilizando um moinho de facas (Tecnal modelo TE-631) a 4000 rpm, para que não 

ocorresse caramelização dos açúcares em função do aumento da temperatura. O 

pseudofruto moído foi classificado utilizando peneira granulométrica 65 mesh Tyler, 

sendo o produto final assumindo um aspecto de farinha.  

 

3.1.3 Determinação do Teor de Umidade 

Foram determinados para o pseudofruto sua quantidade de umidade. Foram 

pesadas previamente seis cápsulas de porcelana e anotada suas massas, após foram 

colocados nas cápsulas aproximadamente 10 gramas de pseudofruto in natura e 

verificada novamente a massa. As cápsulas com as amostras foram colocadas em 

estufa a 105 °C ± 2 °C e pesadas a cada 3 horas, até que a massa constante foi atinja. 

Ao final do processo o teor de umidade foi verificado através da equação 1 

(INSTITUTO ADOLFO LUTZ, 2008). Para as demais análises o pseudofruto 

desidratado e moído foi utilizado. 

𝑈𝑚𝑖𝑑𝑎𝑑𝑒 𝑝𝑜𝑟 𝑐𝑒𝑛𝑡𝑜
𝑚

𝑚
=

𝑛° 𝑑𝑒 𝑔𝑟𝑎𝑚𝑎𝑠 𝑑𝑒 𝑢𝑚𝑖𝑑𝑎𝑑𝑒 (𝑝𝑒𝑟𝑑𝑎 𝑑𝑒 𝑚𝑎𝑠𝑠𝑎 𝑒𝑚 𝑔)∗100

𝑛° 𝑑𝑒 𝑔𝑟𝑎𝑚𝑎𝑠 𝑑𝑎 𝑎𝑚𝑜𝑠𝑡𝑟𝑎
               (1) 

 

3.1.4 Determinação do Teor de Lipídios 

A quantificação de lipídios ou extrato etéreo foi realizada por extração pelo 

método de Goldfish em extrator de gordura (Marca Tecnal, Modelo TE-044-8/50) de 

acordo com a metodologia adaptada do Instituto Adolfo Lutz (2008). Inicialmente as 

câmaras de extração foram secas em estufa por duas horas a 105 ºC, em seguida 

quando atingiram a temperatura ambiente, foram pesadas e suas massas registradas. 

Foram pesados aproximadamente 5 gramas de pseudofruto seco em papel vegetal e 

inserido no “cesto metálico” do equipamento. O extrator operou na temperatura de 90 



38 

 

ºC, com utilização do solvente hexano, onde as amostras foram submetidas ao arraste 

dos lipídios pelo solvente por duas horas, com 30 minutos finais para evaporação do 

solvente. As câmeras foram retiradas e secas novamente em estufa a 105 ºC por duas 

horas e quando atingiram temperatura ambiente, foram pesadas para verificação do 

teor de lipídios. O teor de lipídios foi verificado através da Equação 2. 

𝐿𝑖𝑝í𝑑𝑖𝑜𝑠 𝑝𝑜𝑟 𝑐𝑒𝑛𝑡𝑜
𝑚

𝑚
=  

(𝑀𝑎𝑠𝑠𝑎 𝑑𝑎 𝑐𝑎𝑚𝑎𝑟𝑎 𝑝ó𝑠 𝑒𝑥𝑡𝑟𝑎çã𝑜−𝑀𝑎𝑠𝑠𝑎 𝑑𝑎 𝑐𝑎𝑚𝑎𝑟𝑎)∗100

𝑛º 𝑑𝑒 𝑔𝑟𝑎𝑚𝑎𝑠 𝑑𝑎 𝑎𝑚𝑜𝑠𝑡𝑟𝑎
                          (2) 

 

 

3.1.5 Determinação do Teor de Fibra Bruta 

A amostra desengordurada, resultante da análise de lipídios, foi seca em estufa 

a 105 ºC por duas horas. Foi pesado uma grama da amostra e colocada em um 

saquinho de material TNT (tecido não tecido) e enumeradas. Os saquinhos foram 

colocados no suporte do aparelho determinador de fibras (Marca Tecnal, Modelo TE-

149), onde foram colocados dois litros de solução de H2SO4 1,25%, ligado o 

equipamento e deixado operar a 100ºC por 30 minutos. A solução ácida foi retirada e 

introduzido dois litros de água previamente aquecida, deixada por cinco minutos e 

retirada, este processo com água foi repetido três vezes. Após o enxágue com água 

o processo foi repetido com uma solução de NaOH 1,25%, seguida também de 

lavagem com água previamente aquecida.  

Quando o processo de lavagem com as soluções ácida e básica foi concluído, 

os saquinhos foram lavados com álcool etílico P.A e acetona. Colocados em cápsulas 

de porcelana previamente secas em estufa e pesadas, posteriormente inseridos em 

estufa a 105ºC por quatro horas. Posterior ao período na estufa, quando as amostras 

atingiram temperatura ambiente, tiveram suas massas verificadas, ainda no conjunto 

cápsula+amostra. Após, as amostras foram inseridas em mufla para calcinação por 

duas horas a 550ºC, e posterior aferição da massa, quando atingida temperatura 

ambiente. A quantidade de fibra bruta foi determinada pela Equação 3 (INSTITUTO 

ADOLFO LUTZ, 2008). 

𝐹𝑖𝑏𝑟𝑎 𝑏𝑟𝑢𝑡𝑎 𝑝𝑜𝑟 𝑐𝑒𝑛𝑡𝑜
𝑚

𝑚
=  (((𝐶 − 𝐴) − 𝐷)/𝐵)  ∗ 100                                            (3) 



39 

 

A: Massa do saquinho vazio (g) 

B: Massa da amostra (g) 

C: Massa do conjunto cadinho + saquinho pós estufa (g) 

D: Massa do conjunto cadinho + saquinho pós mufla (g)   

     

3.1.6  Determinação do Teor de Proteínas 

O teor de proteínas foi determinado de acordo com a metodologia de Kjeldahl 

de teor de nitrogênio. Uma grama de amostra foi pesada em balança analítica, sobre 

papel filtro e um papel filtro foi pesado para a prova em branco. O papel com a amostra 

foi transferido para o tubo de Kjeldahl, identificado com cada amostra por números de 

1 a 3. Foram adicionados cinco gramas da mistura catalítica e 10 mL de ácido sulfúrico 

p.a. A mistura catalítica foi composta de sulfato de potássio mais sulfato de cobre na 

proporção 10:1. O tubo foi tampado com papel alumínio com um pequeno orifício no 

centro e colocado no bloco digestor, dentro da capela de exaustão, aquecido 

lentamente até temperatura de 400 ºC até formação de uma solução límpida e 

transparente de tonalidade azul esverdeada. 

A solução foi deixada resfriar e foram adicionados 50 mL de água deionizada 

ao tubo. O tubo frio foi acoplado no destilador de nitrogênio (Marca Tecnal, Modelo 

TE-0363) e adicionado 50 mL de NaOH 50% (m/v) (até coloração escura), sendo 

recolhido em torno de 200 mL de destilado em Erlenmeyer de 250 mL com 25 mL de 

água destilada e 25 mL de solução de ácido bórico 4% (m/v) com 5 gotas de indicador 

misto e titulado o destilado com solução de ácido sulfúrico 0,2 N padronizado até 

ocorrer a viragem de verde para rosa. O percentual de proteínas será calculado pela 

Equação 4 (SOUTHGATE, 1981). 

𝑃𝑟𝑜𝑡𝑒í𝑛𝑎𝑠 𝑝𝑜𝑟 𝑐𝑒𝑛𝑡𝑜
𝑚

𝑚
=

𝑉∗𝑁∗𝑓∗𝐹𝑐∗0,014

𝑃
∗ 100                                                                 (4) 

V = Volume de solução de ácido sulfúrico 0,2 N gastos na titulação (mL); 

N = Normalidade teórica da solução de ácido sulfúrico 0,2 N; 



40 

 

f = Fator de correção da solução de ácido sulfúrico 0,2 N (1,0016); 

P = Massa da amostra (g); 

Fc = Fator de conversão da relação nitrogênio/proteína, de acordo com o 

produto (6,25 para produtos em geral de acordo com a metodologia)   

       

3.1.7  Determinação do Teor de Carboidratos Totais  

A determinação do teor de carboidratos totais foi realizada através do método 

de carboidratos por diferença. Esse método consiste em considerar os valores de 

proteínas, fibras brutas, lipídios, cinzas e umidade, anteriormente determinados e 

considera um percentual de 100% e descontados os percentuais das análises 

consideradas, conforme Equação 5 (CECCHI, 2003). 

𝐶𝑎𝑟𝑏𝑜𝑖𝑑𝑟𝑎𝑡𝑜𝑠
𝑚

𝑚
= 100 – (% 𝑢𝑚𝑖𝑑𝑎𝑑𝑒 + %𝑐𝑖𝑛𝑧𝑎𝑠 + % 𝑝𝑟𝑜𝑡𝑒í𝑛𝑎𝑠 + % 𝑔𝑜𝑟𝑑𝑢𝑟𝑎𝑠 +  % 𝑓𝑖𝑏𝑟𝑎𝑠)    (5) 

 

3.1.8 Determinação do Valor Calórico 

 O valor calórico foi determinado em kcal por 100 gramas de pseudofruto, pelo 

método de conversão das quantidade centesimais de proteínas, lipídios e carboidratos 

totais presentes no alimento (ANDERSON et al., 1988). Assim o cálculo utilizado é 

apresentado a Equação (6): 

𝑉𝑎𝑙𝑜𝑟 𝐶𝑎𝑙ó𝑟𝑖𝑐𝑜
𝐾𝑐𝑎𝑙

100𝑔
= ((%𝑐𝑎𝑟𝑏𝑜𝑖𝑑𝑟𝑎𝑡𝑜𝑠 𝑡𝑜𝑡𝑎𝑖𝑠 ∗

4𝑘𝑐𝑎𝑙

𝑔
) + (%𝑝𝑟𝑜𝑡𝑒í𝑛𝑎𝑠 ∗

4𝑘𝑐𝑎𝑙

𝑔
) + (%𝑙𝑖𝑝í𝑑𝑖𝑜𝑠 ∗

9𝑘𝑐𝑎𝑙

𝑔
)) (6) 

 

3.2 Etapa 2 - Extração de polissacarídeos 

A segunda etapa do trabalho compreende um pré-tratamento para preparação 

do pseudofruto seco e moído para a exposição ao sonicador e consequente extração 

dos polissacarídeos pelo método de ultrassom, realizado no laboratório de Biologia 

Molecular da Universidade do Vale do Taquari - Univates. 



41 

 

 

3.2.1 Pré-tratamento 

Aproximadamente 100g do pseudofruto seco e moído foram imersos em álcool 

etílico 80% a temperatura ambiente por 24 horas, para remoção de lipídios, 

monossacarídeos, corantes e outras impurezas de moléculas pequenas. Em seguida 

a amostra foi filtrada em papel filtro e funil e seca a temperatura ambiente. Após 

secagem em temperatura ambiente o material passou novamente pela peneira 

granulométrica 65 mesh Tyler (YANG et al., 2019b). 

 

3.2.2 Extração do extrato por ultrassom 

A um becker de 250 ml foram adicionados 5 gramas da amostra e 50 ml de 

água destilada. O conjunto foi submetido ao sonicador (Marca Ultronique, Modelo 

DESRUPTOR) na condição nomeada de amostra A (A) (Tabela 2), sendo a condição 

de extração baseada de acordo com estudos de Yang et al. (2019b) e Fidelis (2014). 

 

Tabela 2 - Condição operacional do processo de extração por ultrassom 

 
Temperatura (ºC) Frequência (kHz) Tempo (min) Potência (W) 

A 60 20 50 550 

Fonte: Adaptado de Yang et al. (2019b) e Fidelis (2014). 

 

Após extração por ultrassom, os sobrenadantes da amostra A foram recolhidos 

por filtração a vácuo em papel filtro. Os papéis filtro, contendo o particulado, foram 

secos em estufa por duas horas a 105 ºC e pesados para verificação do rendimento 

da extração. O sobrenadante separado do precipitado foi concentrado até 25 mL em 

rotaevaporador  e posteriormente a amostra foi liofilizada em um liofilizador a vácuo. 

A quantidade de extrato extraído foi calculada através da equação 6: 

𝑄𝑢𝑎𝑛𝑡𝑖𝑑𝑎𝑑𝑒 𝑑𝑒 𝑒𝑥𝑡𝑟𝑎𝑡𝑜 𝑝𝑜𝑟 𝑐𝑒𝑛𝑡𝑜 =  
𝑚𝑎𝑠𝑠𝑎 𝑓𝑖𝑛𝑎𝑙 𝑑𝑒 𝑒𝑥𝑡𝑟𝑎𝑡𝑜 𝑠𝑒𝑐𝑜 𝑔

𝑚𝑎𝑠𝑠𝑎 𝑖𝑛𝑖𝑐𝑖𝑎𝑙 𝑑𝑜 𝑝𝑠𝑒𝑢𝑑𝑜𝑓𝑟𝑢𝑡𝑜 𝑝ó 𝑔
∗ 100  (6) 



42 

 

3.3  Etapa 3 - Caracterização do extrato 

A terceira etapa contou com a caracterização do extrato por cromatografia. Ao 

final foi avaliada a capacidade antioxidante DPPH in vitro do extrato e da farinha assim 

como suas atividades quelantes sobre Fe 2+. 

 

3.3.1  Caracterização do extrato 

A amostra de extrato em solução aquosa foi preparada para análise por filtração 

utilizando um filtro de papel de 13mm e 0,22µm. Os monossacarídeos componentes 

dos polissacarídeos do extrato foram detectados com o auxílio de cromatografia pelo 

cromatógrafo HPLC (Shimadzu Corporation, Japan, model LC-20AD) por dois 

métodos diferentes. No método 1 a coluna cromatográfica utilizada foi a coluna de 

carboidrato com fluxo de 1,4 mL/min, temperatura de 30°C, volume de injeção de 20uL 

e fase móvel composta por acetonitrila:água (75:25). Já no método 2, a coluna 

utilizada foi a Aminex HPX-87H, 300x7,8mm, 9 µm com fluxo de 0,5 mL/min, 

temperatura de 60°C, detector do tipo RID, volume de injeção de 5uL e fase móvel de 

H2SO4 5 mmol/L. A caracterização foi realizada no Laboratório de Análises e 

Pesquisas Ambientais, na Universidade de Caxias do Sul. 

. 

3.3.2 Determinação do potencial de antioxidante DPPH 

A determinação do potencial antioxidante do extrato e da farinha foi 

quantificado pelo método do radical DPPH, baseado na metodologia de Choi e 

colaboradores (2002).  Para o padrão de ácido ascórbico e extratos (polar e apolar), 

foram preparados seis concentrações que variaram entre 31,25-0,98 μg/ml (ácido 

ascórbico), 7,81-250 μg/ml (polar) e 625-10.000 μg/ml (apolar), através de diluições 

seriadas em solvente etanol. Já a solução de DPPH foi preparada em etanol a 0,3 

mM.  

A atividade antioxidante das amostras foi conduzida da seguinte forma: 214,3 

μL de amostra em cada concentração com adição de 85,7 μL da solução de DPPH. 

Paralelamente foi conduzido um branco para cada amostra contendo 214,3 μL da 



43 

 

amostra e 85,7 μL de etanol. O controle recebeu 214,3 μL de etanol e 85,7 μL de 

DPPH, todos amostras foram preparadas em triplicata. Após 30 minutos de reação 

sob abrigo da luz as absorbâncias (abs) foram medidas em equipamento de 

espectrofotômetro UV-visível em 519 nm (Marca Thermo Scientific, Modelo Genesys 

10S UV-VIS). A porcentagem da atividade antioxidante frente ao radical DPPH foi 

calculada conforme a Equação 7: 

𝐴𝑡𝑖𝑣𝑖𝑑𝑎𝑑𝑒 𝐷𝑃𝑃𝐻 % = 100 −
(𝑎𝑏𝑠 𝑎𝑚𝑜𝑠𝑡𝑟𝑎−𝑎𝑏𝑠 𝑏𝑟𝑎𝑛𝑐𝑜)∗100

𝑎𝑏𝑠 𝑐𝑜𝑛𝑡𝑟𝑜𝑙𝑒
                                              (7) 

 

A concentração inibitória IC50 foi calculada através de regressão linear, onde 

a abscissa representa a concentração de amostra testada e a ordenada a 

porcentagem de inibição obtida. 

 

3.3.3 Determinação do potencial de quelante de Fe2+ 

Para avaliação da atividade quelante de íons Fe2+ , foram utilizados 1 grama de 

amostra em tubos de ensaio âmbar de 25 mL. Após foram adicionados 3,7 mL de 

água deionizada ao tubo de ensaio mais 0,1 mL de FeSO4 2 mM e 0,2 mL de ferrozina 

5 mM [3-(2-piridil)-5,6-bis-(4-ácido fenil sulfônico) -1,2,4-triazina]. O padrão para este 

teste foi produzido com a substituição da amostra por 1 mL de água deionizada. A 

mistura foi agitada por 20 minutos e feita leitura a 562 nm calibrando o aparelho com 

auxílio de uma amostra com o branco (neste caso foi uma solução de EDTA 2%). A 

redução na absorbância indica atividade quelante de metais e a atividade calculada 

de acordo com a Equação 8 (LIMA et al., 2010). 

𝐴𝑡𝑖𝑣𝑖𝑑𝑎𝑑𝑒 𝑞𝑢𝑒𝑙𝑎𝑛𝑡𝑒 𝑑𝑒 𝐹𝑒2+ 𝑝𝑜𝑟 𝑐𝑒𝑛𝑡𝑜 = 100 − [(
𝐴𝑝−𝐴𝑡

𝐴𝑝
) ∗ 100)                             (8) 

Ap: absorbância do padrão 

At: At é absorbância teste (amostras). 

 

A concentração inibitória IC50 foi calculada através de regressão linear, onde 

a abscissa representa a concentração de amostra testada e a ordenada a 

porcentagem de inibição obtida. 



44 

 

 

4 RESULTADOS E DISCUSSÕES 

4.1 Caracterização do Pseudofruto da H. dulcis Thunb. 

A utilização do pseudofruto da H. dulcis Thunb. ainda é pouco explorada para 

alimentação humana, tanto na forma natural do pseudofruto com em suas formas 

processadas em farinhas ou doces e compotas, assim sua caracterização não está 

largamente disponível na literatura (BAMPI et al., 2010), contudo como o extrato e a 

farinha obtidos neste trabalho podem vir a serem empregados como aditivos 

alimentares, a caracterização pseudofruto utilizado se torna importante.  

Na caracterização centesimal do pseudofruto da H. dulcis Thunb.  verificou-se 

por análises físico-químicas os porcentuais de lipídios, proteínas, carboidratos, fibra 

bruta, umidade e cinzas. Todas análises foram realizadas com os pseudofrutos secos 

e triturados na forma de farinha, com exceção da análise de umidade que se realizou 

com os pseudofrutos ainda in natura. A caracterização está apresentada na Tabela 3. 

 

 

 

 

 



45 

 

Tabela 3 – Caracterização centesimal do pseudofruto da H. dulcis Thunb. 

 
 

Análises 
Base 

Úmida 
(g/100g) 

Desvio 
Padrão 
Base 

Úmida 

Base 
Seca 

(g/100g) 

Desvio 
Padrão 
Base 
Seca 

Umidade 48,54 ±0,91 - - 

Cinzas 1,38 ±0,21 2,68 ±0,41 

Proteína bruta 1,49 ±0,05 2,89 ±0,09 

Lipídios 0,17 ±0,01 0,34 ±0,03 

Fibra bruta 3,25 ±0,52 6,32 ±1,01 

Carboidratos totais 45,17 ±0,71 87,78 ±1,38 

Valor calórico (kcal 100g-1) 188,20 - 365,72 - 

Fonte: Da Autora (2020). 

 

Ao verificar a umidade, o valor encontrado se apresenta inferior aos 

encontrados na literatura, como 61,18 g.100g-1 (MACHADO et al., 2019), 67,65 

g.100g-1 (MAIEVES et al., 2015a), 53,23 g.100g-1  (±0,96) (SOUZA et al., 2017) e 54,08 

g.100g-1 (BAMPI et al., 2010), sendo está diferença possivelmente causada pelas 

diferenças de nutrição do solo, região, chuvas e condições ambientais (MACHADO et 

al., 2019). A região no período da maturação e colheita do pseudofruto apresentava 

grave estiagem o que proporcionou baixo teor de umidade e baixa produtividade em 

grande quantidade de espécies vegetais, como grãos e frutas (SEAPDR, 2020), o 

mesmo pode ser ocorrido com a H. dulcis Thunb., gerando o teor de umidade abaixo 

do encontrado na literatura. 

O teor de cinzas em vegetais pode variar de 0,1% até 15% (MORRETO, 2008), 

assim o encontrado para o pseudofruto da H. dulcis Thunb. foi de 1,38 g.100g-1 

(±0,41), está dentro destes limites. A quantidade de cinzas em vegetais está 

relacionado a quantidade de minerais presente no pseudofruto, onde a fração 

centesimal encontrada neste trabalho se apresentou próxima à verificada por Fiori et 

al. (2015) de 1,65 g.100g-1 e 1,22 g.100g-1 por Maieves et al. (2015b). Segundo Cecchi 

(2003), a presença de cinzas mostra a existência de minerais como Cu, Zn, Mg Fe, B 



46 

 

e K, contudo a análise de cinzas não expressa fidedignamente a quantidade 

qualitativa e quantitativa de minerais do vegetal in natura, pois a incineração entre 500 

e 570ºC pode ocasionar perdas e degradação de alguns minerais como o Mg. 

A quantidade de proteína encontrada neste trabalho para o pseudofruto está 

abaixo do encontrado em literatura com 3,74 g.100g-1 (BAMPI et al., 2010) e 3,33 

g.100g-1 (MOECKE, 2000) e acima do encontrado por Maieves et al. (2015) que foi de 

0,41 g.100g-1 . Contudo, como o método de Kjeldahl para determinação das proteínas 

se baseia na quantificação de teor de nitrogênio orgânico total, outros compostos 

nitrogenados podem ser detectados, como no caso das porfirinas, assim a quantidade 

de proteína determinada pelo método Kjeldahl pode sofrer variações dependendo da 

quantidade existente de outros compostos interferentes de nitrogênio (CECCHI, 

2003).  

Apesar do valor de proteína verificado no trabalho se encontrar menor que o 

encontrado na literatura, o pseudofruto em estudo ainda apresenta quantidade 

superior de proteína que outros apêndices vegetais como  a maça (Malus domestica) 

com 0,30 g.100g-1 e a banana (Musa basjoo) com 1,30 g.100g-1 , os quais possuem o 

restante de sua composição próximo ao do pseudofruto da H. dulcis Thunb. 

(QUIROGA, 2014). Essa quantidade relativamente diminuta de proteína em vegetal é 

recorrente em diversas espécies, pois as proteínas cumpre basicamente apenas o 

papel de catalisador de enzimas em processos metabólicos, amadurecimento e 

senescência, consequentemente tendo a tendência de diminuir seu teor ao longo do 

avanço da maturação (CHITARRA; CHITARRA, 2005). 

 Os lipídios encontrados em vegetais como frutas e hortaliças apresentam teor 

diminuto em relação aos outros compostos, apenas oleaginosas apresentam valores 

consideráveis de lipídios quando comparados a outros vegetais (ROCHA et al., 2012). 

Assim o pseudofruto da H. dulcis Thunb. apresentou 0,17 g.100g-1 (±0,03), enquanto 

que os teores de lipídios encontrados na literatura foram superiores como de 0,41 

g.100g-1 (MAIEVES et al., 2015a) e inferiores como encontrado por Almeida; Valsechi 

(1966) de 0,10 g.100g-1 de lipídios. 

O teor de fibra bruta encontrado para o pseudofruto da H. dulcis Thunb. foi de 

3,25 g.100g-1 (±1,01), onde a quantidade de fibras presente em vegetais é interessante 



47 

 

ao consumidor, uma vez que a quantidade de fibras brutas está intimamente ligada a 

existência de compostos bioativos. No Brasil, para um alimento ser considerado fonte 

de fibras deve possuir mais de 3 g de fibras por 100 g de produto (BRASIL, 1998), 

assim o pseudofruto em estudo pode ser considerado alimento fonte de fibras, pois 

ultrapassa este valor. O consumo de 100 gramas do pseudofruto da H. dulcis Thunb. 

já pode suprir 8,55% da quantidade diária necessária de consumo de fibras para 

homens (38 g dia-1 de fibras) e 13% da quantidade diária de fibras para mulheres (25 

g dia-1 de fibras) (TRUMBO et al., 2002). 

Na determinação de carboidratos realizada por diferença, o valor encontrado 

foi de 45,17 g.100g-1 (±1,38) o que engloba todos açúcares como monossacarídeos, 

como glicose e frutose, oligossacarídeos como maltose e rafinose, por exemplo e 

polissacarídeos como amido e celulose (MORRETO, 2008). Assim a quantidade 

determinada de carboidratos totais por diferença para o pseudofruto de H. dulcis 

Thunb. são próxima de 48,30 g.100g-1 (FIORIO et al., 2015) e 47,60 g.100g-1 

(MOECKE, 2000).  A quantidade diária recomendada de consumo de carboidratos por 

dia para adultos é de 130 g. dia-1 (TRUMBO et al., 2002), logo a quantidade de 

carboidratos presentes em 100 gramas de pseudofruto da H. dulcis Thunb., supre 

cerca de 35% da quantidade ideal diária de consumo de carboidratos, sendo o 

pseudofruto uma fonte interessante de energia.  

O valor calórico do pseudofruto se apresentou em 188,20 kcal 100g-1, este 

resultado se encontra superior ao verificado por Bampi et al. (2010) de 105,56 kcal 

100g-1 e 102,67 kcal 100g-1 verificado por Maieves et al. (2015b), contudo o valor 

encontrado neste estudo é inferior ao encontrado por Moecke et al. (2000) de 216,80 

kcal 100g-1 e 207,42 kcal 100g-1 por Fiorio et al. (2015). Como o valor energético é 

inerente a quantidade de lipídios, proteínas e carboidratos (ANDERSON et al., 1988), 

o teor calórico irá se alterar de acordo com a composição, logo os autores que 

encontraram valores superiores deste parâmetro também obtiveram quantidades 

superiores de carboidratos, o que resulta em valor energético elevado em 

consideração aos demais. 

 

4.2 Caracterização do extrato do Pseudofruto da H. dulcis Thunb. 



48 

 

Com o objetivo de extrair polissacarídeos do pseudofruto da H. dulcis Thunb., 

foi utilizado o método extração por ultrassom. Assim, ao final do processo foi obtido 

através da Equação 6, a quantidade de material extraído em porcentagem. Logo, o 

rendimento de extração foi de 8,94% (±1,56) de material extraído. 

A quantidade de material extraído é próxima ao resultado máximo de extração 

de polissacarídeos de 9,02% (±0,29) obtido por Yang et al. (2020), na condição 

ultrassônica de dupla frequência com condições de operação, compreendendo 58 ºC, 

66 minutos, 500 W e 28 e 40 kHz. Esse resultado também encontra-se próximo ao 

obtido por Yang et al. (2019a), pelo método de extração acelerada por solvente com 

rendimento de extração de 8,62% (±0,29). 

Contudo, para o método de extração por ultrassom, o rendimento obtido de 

8,94% (±1,56) de material extraído está abaixo da quantidade obtida por autores em 

condições de operação diferentes. Para Liu et al. (2015) a maior rentabilidade de 

polissacarídeos brutos foi de 25,12% (±0,14), com tempo de exposição ao ultrassom 

de 65 minutos, 60 ºC e potência de 362 W, já Yang et al. (2019b) obteve um 

rendimento de material extraído de 47,81% (±1,56%), com condição de extração de 

330 W, temperatura de 68 °C e tempo de 22 minutos. Assim, observa-se que a 

quantidade obtida no processo de extração depende das condições de operação, e 

com isso diferentes compostos podem ser extraídos. 

Com isso a caracterização do extrato obtido foi realizada por cromatografia, por 

dois métodos diferentes, onde no método 1 foi possível identificar e quantificar 

açúcares, tais como glicose, frutose, sacarose, lactose, maltose e sorbitol, onde foram 

identificados os picos correspondentes a frutose e glicose, com tempo de retenção de 

5,33 e 5,89 minutos, respectivamente. Assim o perfil cromatográfico dos carboidratos 

presentes no extrato, pelo método 1 está ilustrado na Figura 6. 



49 

 

Figura 6 - Perfil cromatográfico dos carboidratos presentes no extrato do pseudofruto 

da  H. dulcis Thunb., pelo método 1. 

Fonte: Da autora (2020). 

 

Já com o método 2, é possível identificar e quantificar açúcares, ácidos 

orgânicos e álcoois, onde para o extrato analisado foi identificado picos 

correspondentes a glicose e frutose, com tempo de retenção de 10,99 e 11,88 

minutos, respectivamente. O pico de 15,39 minutos pode ser indicativo de ácido lático, 

em quantidades traços. Assim através dos métodos 1 e 2, foi possível quantificar os 

monossacarídeos presentes no extrato, como exposto na Tabela 4. 

 

 Tabela 4 – Perfil quantitativo e qualitativo de monossacarídeos presentes no extrato 

do pseudofruto da  H. dulcis Thunb. extraído por ultrassom, pelos métodos 

cromatográficos 1 e 2. 

Monossacarídeos Método 1 Método 2 Concentração média  

Glicose (g.L-1) 1,94 1,71 1,79 (± 0,13) 

Frutose (g.L-1) 3,12 3,01 3,04 (± 0,06) 

Fonte: Da autora (2020). 

 



50 

 

Nos resultados encontrados por Yang et al. (2019b) e Yang et al. (2020) os 

monossacarídeos identificados como constituintes dos polissacarídeos extraídos 

foram manose, ramnose, ácido galacturônico, glicose, galactose e arabinose. 

Enquanto que na extração deste trabalho se obteve apenas os monossacarídeos 

glicose e frutose. Porém em extrações os polissacarídeos extraídos por diferentes 

tratamentos ultrassônicos são qualitativamente semelhantes, eles variam apenas de 

acordo com seu conteúdo relativo de monossacarídeos (SUN et al., 2009). Desta 

forma pode-se verificar que a condição utilizada de ultrassom neste trabalho não foi 

efetiva na extração de polissacarídeos característicos do pseudofruto da H. dulcis 

Thunb. 

A variação de parâmetros como temperatura de extração, potência do 

ultrassom, frequência e até mesmo quantidade de água na solução solvente:farinha 

pode influenciar para aumentar ou diminuir a efetividade da extração de 

polissacarídeos (PEREIRA et al., 2019).  

Assim a temperatura de extração é um dos fator que mais influencia a eficiência 

de extração. O aumento da difusão dos polissacarídeos e a solubilidade no solvente 

de extração aumentam com o aumento da temperatura, pois causa  um incremento 

da massa de polissacarídeos saindo das partículas do vegetal para a solução de 

extração. O coeficiente de extração aumenta com o aumento da temperatura de 

extração devido ao aumento da solubilidade dos polissacarídeos, em uma faixa de 

temperatura de 60 a 90 ºC, contudo não é recomendado que se ultrapasse essa 

temperatura em função do custo operacional e da degradação do vegetal  (YE; JIANG, 

2011). 

O tempo de extração é outro fator que afeta o rendimento da extração e a 

seletividade do fluido. Isso ocorre devido a necessidade de tempo de extração 

suficiente para que o líquido penetre no pó a ser processado. Assim a quantidade de 

solvente também influencia o rendimento da extração de polissacarídeos por 

ultrassom, se a proporção de água para matéria-prima for muito baixa, os 

polissacarídeos do vegetal não podem ser completamente extraídos. Caso contrário, 

se a proporção for muito alta, isso causará mais custo de processo (LI et al., 2012). 

Para a extração de polissacarídeos da uva japonesa por ultrassom a proporção ideal 

de solvente e matéria-prima é de 40: 1 a 100: 1 (mL.g-1) respectivamente, mas não há 



51 

 

registro de mudança no rendimento de polissacarídeos conforme a proporção 

aumenta (YANG et al., 2019b). 

Já o fator que mais influencia no sucesso da extração por ultrassom é a 

potência do equipamento. Os resultados encontrados por Liu et al. (2015) indicam que 

o rendimento de extração dos polissacarídeos é aumentado com o aumento da 

potência ultrassônica e atingiu a faixa de 300 a 450 W, passando a diminuir com o 

aumento da potência ultrassônica. O ultrassom facilita a ruptura das paredes 

celulares, de modo que os polissacarídeos podem ser dissolvidos mais rapidamente. 

No entanto, a potência ultrassônica excessiva pode resultar na degradação da 

estrutura dos polissacarídeos (LI et al., 2012). 

Assim analisando a condição de extração utilizada neste trabalho, a 

temperatura de extração utilizada estava dentro da faixa ideal de 60 a 90 ºC, já a 

proporção de solvente e matéria-prima foi de 50 mL de água para 5 gramas de farinha, 

sendo a proporção de líquido de extração muito inferior ao descrito por Yang et al. 

(2019b) de 40: 1 a 100: 1 (mL.g-1). Já a potência empregada de 550 W, que se tratava 

da potência máxima do sonicador utilizado, está aquém do ideal de potência 

ultrassônica descrita por Liu et al. (2015), para extração de polissacarídeos do 

pseudofruto da H. dulcis Thunb.  

Logo, o rendimento abaixo do descrito em literatura e a inexistência de 

monossacarídeos característicos dos polissacarídeos do pseudofruto da H. dulcis 

Thunb., para a extração por ultrassom, podem estar relacionados às condições de 

operação utilizadas para este método de extração. 

 

4.3 Atividade antioxidante DPPH e quelante de Fe+2 da farinha do Pseudofruto 

da H. dulcis Thunb. 

Os mecanismos antioxidantes nos tecidos biológicos são extremamente 

complexos e não existe um método que possa fornecer resultados inequívocos 

(CAROCHO et al., 2015). Assim as atividades antioxidantes da farinha do pseudofruto 

da H. dulcis Thunb. foram verificadas a partir no método DPPH (peroxidação do 2,2-

difenil-1-picrilhidrazil) e da quelação de Fe+2 . Os resultados foram obtidos a partir das 



52 

 

equações geradas por regressão linear apartir das absorbâncias registradas para 

cada método e as atividade antioxidante de DPPH e quelantes expressas por meio do 

IC50, onde representa a concentração mínima da amostra para inibição de 50% do 

radical DPPH ou para quelação do íon de Fe+2 em mg/mL (SILVA et al., 2018). 

 Para a atividade DPPH da farinha, a equação da reta foi 𝑦 = 62,087𝑥 −  0,0428 

com 𝑅2 = 0,9992, representada na Figura 7, onde apresenta a curva padrão dos 

valores de concentração versus absorbância. 

 

Figura 7 – Curva padrão da atividade antioxidante de DPPH da farinha do pseudofruto 

da H. dulcis Thunb. 

Fonte: Da Autora (2020). 

 

Já para a atividade quelante de Fe+2 da farinha, a equação da reta foi 𝑦 =

48,567𝑥 −  0,0448 com 𝑅2 = 0,9978, representada no Figura 8, onde apresenta a 

curva padrão dos valores de concentração versus absorbância. 

y = 62,087x + 0,0428
R² = 0,9992

0,00

0,05

0,10

0,15

0,20

0,25

0,30

0,0000 0,0005 0,0010 0,0015 0,0020 0,0025 0,0030 0,0035 0,0040 0,0045

A
b

s
o

rb
â

n
c
ia

Concentração (mg/mL)



53 

 

Figura 8 – Curva padrão da atividade quelante de Fe+2 da farinha do pseudofruto da 

H. dulcis Thunb.  

Fonte: Da Autora (2020). 

 

Assim o potencial de antioxidante DPPH e quelante de Fe+2 para a farinha do 

pseudofruto da H. dulcis Thunb. expresso em IC50, está apresentado na Tabela 5. 

 

Tabela 5 – IC50 da atividade antioxidante DPPH e quelante de Fe+2  da farinha do 

pseudofruto da H. dulcis Thunb. 

 

Amostra 
IC50 (mg.mL-1) 

Antioxidante DPPH  Quelante de Fe+2 

Farinha 3,36 (±0,01) 2,00 (±0,01) 

Fonte: Da Autora (2020). 

 

y = 48,567x + 0,0448
R² = 0,9978

0,00

0,05

0,10

0,15

0,20

0,25

0,30

0,0000 0,0005 0,0010 0,0015 0,0020 0,0025 0,0030 0,0035 0,0040 0,0045

A
b

s
o

rb
â

n
c
ia

Concentração (mg/mL)



54 

 

O valor encontrado para atividade antioxidante de DPPH para o pseudofruto da 

H. dulcis Thunb. de 3,36 (±0,01) mg.mL-1 (IC50), vai de encontro com o encontrado 

em literatura de 3,58 (±0,04) mg.mL-1 (IC50) (MORALES et al., 2017). Ambos 

resultados foram obtidos com pseudofrutos da uva japonesa em estágio avançado de 

maturação, assim a capacidade antioxidante de sequestro do íon DPPH tendem a 

aumentar (WANG, 2017). 

Frutos e pseudofrutos de modo geral, conforme atingem estágios finais de 

maturação, sofrem um aumento na capacidade antioxidante, apesar da diminuição 

dos compostos fenólicos totais. O aumento de flavonóis e antocianinas, 

provavelmente sintetizados a partir de outros compostos fenólicos nos estágios 

maduros, pode contribuir para esses aumentos, além da maior presença de 

polissacarídeos em estágios avançados de maturação (MAIEVES et al., 2015b).  

A atividade antioxidante de outras partes botânicas da H. dulcis Thunb., 

também já foram caracterizadas por diferentes autores. Cho et al. (2013) descreveram 

os valores de DPPH dos extratos de folhas obtidos com diferentes solventes (por 

exemplo, metanol, etanol, água quente, n-hexano) e seus correspondentes compostos 

isolados, sendo os extratos etanólico e metanólico os com melhores resultados em 

IC50 de 83 e 112 mg.mL-1, respectivamente. Já, Morales et al. (2017) verificaram 

atividade antioxidante de DPPH e ABTS para o extrato de caule  H. dulcis Thunb. 

A ação de antioxidante de DPPH presente na farinha do pseudofruto na H. 

dulcis Thunb. se apresenta próxima a outros vegetais, como o potencial antioxidante 

presente no maracujá doce (Passiflora alata Curtis) de 3,50 mg.mL-1 (IC50) e no 

maná-cubiu (Solanum sessiliflorum) de 3,10 mg.mL-1 (IC50) (SCHMIDT, 2008).  

Ambas ações de antioxidante DPPH e quelante de ferro podem estar presentes 

na H. dulcis Thunb. graças a presença de ácido ascórbico, importante agente 

antioxidante. A uva japonesa apresenta 4,25 mg.100 g-1 de ácido ascórbico (vitamina 

C) o que representa 4,72% da ingestão diária recomendada (MAIEVES et al., 2015a). 

Assim a fins comparativos, na Tabela 6, estão as quantidade de IC50 de atividade de 

DPPH dos três conservantes comerciais mais utilizados o ácido ascórbico, BHA 

(butilhidroxianisol) e BHT (butilhidroxitolueno)  (RABÊLO et al., 2014). 

 



55 

 

Tabela 6 – Capacidade antioxidante de DPPH de conservantes comerciais e da 

farinha do pseudofruto da H. dulcis Thunb. 

Produto DPPH (IC50, mg.ml-1) 

Farinha H. dulcis Thunb.* 3,3600 (±0,0100) 

Ácido ascórbico** 0,0026 (±0,0009) 

BHA ** 0,0177 (±0,0031) 

BHT** 0,0041 (±0,0310) 

Fonte: *Da autora (2020), **adaptado de Rabêlo et al. (2014). 

 

Assim, apesar dos conservantes possuírem IC50 inferior ao da farinha, 

observa-se que a mesma possui atividade antioxidante DPPH interessante, uma vez 

que se trata de um material bruto com pouco processamento, tendo potencial para 

possuir tal função antioxidante. 

Já o valor encontrado para atividade antioxidante de quelante de Fe2+ para o 

pseudofruto da H. dulcis Thunb. de 2,00 (± 0,01) mg.mL-1 (IC50) vai de encontro com 

o valor em literatura de 1,89 (± 0,02) mg.mL-1 (IC50) (MORALES et al., 2017). Ambos 

resultados foram obtidos com pseudofrutos da uva japonesa em estágio avançado de 

maturação, onde a capacidade para o sequestro de íons de ferro, diminui com a 

maturação, conforme observado por Morales et al. (2017). 

Na literatura há registro do uso da farinha do pseudofruto da H. dulcis Thunb. 

como conservante de cárneos e massas para biscoitos. Schaefer et al. (2000) utilizou 

a farinha do pseudofruto como antioxidante para conservação de mortadela do tipo 

Bologna, onde obteve desenpenho semelhante a conservantes comerciais como BHT 

e BHA. Já para a preparação de massas de biscoitos do tipo cookie, a farinha do 

pseudofruto da H. dulcis Thunb. também foi utilizada como conservante e adoçante 

natural, onde os resultados de controle microbiológicos se apresentaram conforme os 

padrões de qualidade estabelecidos pela legislação (ALVES DA CUNHA; REINERI; 

SCHROLL LOSS, 2015) 

 



56 

 

4.4 Atividade antioxidante DPPH e quelante de Fe+2 do extrato do Pseudofruto 

da H. dulcis Thunb. 

 Na avaliação da atividade antioxidante de DPPH e de quelação de Fe+2, o 

extrato obtido através da utilização de ultrassom não mostrou atividade antioxidante 

para ambas análises. O extrato não apresentou absorbância distinta ao branco para 

análise de DPPH e de quelação de Fe+2 assim conclui-se que as condições de 

extração 550 W, 20 kHz, 60 ºC e 50 minutos de exposição ao ultrassom não são 

favoráveis para obtenção de extrato com essas atividades bioativas. 

Isso pode ter ocorrido pela condição de extração a 550 W de potencial 

ultrassônico, pois apesar do ultrassom facilitar a ruptura das paredes celulares, a 

potência ultrassônica excessiva pode resultar na degradação da estrutura dos 

polissacarídeos (LI et al., 2012). Já a atividade de eliminação de radicais DPPH dos 

polissacarídeos está relacionada à sua composição química, peso molecular e 

composição dos monossacarídeos, porque está ligada a capacidade de doação de 

elétrons dos polissacarídeos (YANG et al., 2020). Logo a ausência destes compostos 

no extrato analisado pode ser uma causa da ausência da atividade antioxidante. 

Dos polissacarídeos presentes no pseudofruto da H. dulcis Thunb. os 

monossacarídeos que os compõem que possuem maior atividade antioxidante DPPH 

e quelante são os carboidratos glicose, galactose e arabinose, assim diferentes 

composições de monossacarídeos afetam as propriedades funcionais e capacidade 

antioxidante de polissacarídeos (CAPEK; MACHOVÁ; TURJAN, 2009). A presença 

dos monossacarídeos glicose e galactose no extrato H. dulcis Thunb. são um 

indicativo de atividade antioxidante, uma vez que estes carboidratos na forma de D-

glicose e D-galactose são precursores do ácido ascórbico, potente antioxidante 

(RIBEIRO; SERAVALLI, 2004). Assim a ausência destes monossacarídeos 

combinados no extrato, podem estar relacionados também com a ausência de 

atividade antioxidante quelante e DPPH. 

 

 

 



57 

 

 

5 CONCLUSÃO 

Com este trabalho, verificou-se que o pseudofruto da H. dulcis Thunb. 

proveniente da região serrana do estado do Rio Grande do Sul apresentou em sua 

composição semelhante ao encontrado em literatura, tendo valores de carboidratos, 

proteínas, lipídios, fibras brutas e valor energético coerentes com os demais autores. 

A farinha do pseudofruto da H. dulcis Thunb. apresentou atividade antioxidante 

do tipo DPPH e quelante de Fe2+ próxima ao encontrada na literatura, o que corrobora 

com a capacidade antioxidante do pseudofruto da uva japonesa. Contudo quando 

analisado o extrato obtido, este não apresentou capacidade antioxidante, em 

comparação com as atividades registradas em literatura para esse vegetal. 

Já a extração por ultrassom de polissacarídeos do pseudofruto da uva japonesa 

não ocorreu de forma bem sucedida, pois de acordo com as análises cromatográficas, 

não há no extrato a presença de monossacarídeos típicos de polissacarídeos 

extraídos pela técnica de ultrassom. Logo, este fato pode ter relação com as condições 

de extração utilizadas. 

Contudo, observou-se propriedades importantes como atividade antioxidante 

DPPH e quelante de ferro na farinha do pseudofruto da H. dulcis Thunb. o que 

possibilita diferentes área de aplicações na indústria alimentícia, agregando valor e 

renda a região.   

 



58 

 

 

6 SUGESTÃO PARA TRABALHOS FUTUROS 

A fim de estudar mais propriedades bioativas da H. dulcis Thunb. e aprimorar 

as condições de extração de polissacarídeos por ultrassom, recomenda-se que em 

trabalhos futuros sejam alterados parâmetros como temperatura, potência do 

equipamento e tipo de solvente no momento da extração de polissacarídeos, 

alterações com o objetivo de aumentar o rendimento de material extraído e obter 

polissacarídeos próximos aos encontrados em literatura para o pseudofruto da H. 

dulcis Thunb. 

 

 

 

 

 

 



59 

 

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